Биохимические нормы крови свиней

Биохимические нормы крови свиней thumbnail

Биохимические показатели Ед. изм. Свиноматки Поросята
Новорожден-ные до кормления 4-6 дни жизни
Сыворотки крови
Белок общий
 
г%
 
7,5-8,5
 
2,5-3,5
 
5,2-6,3
Гамма-глобулин г% 1,8-2,5 0-0,32 1,0-1,2
Альбумины г% 3,0-3,4    
Кальций общий мг% 10-12 10-13 10-13
Фосфор неорганический мг% 5,0-7,0 5,0-9,5 5,0-8,0
Мочевина мг% 30,0-40,0    
Активность щелочной фосфатазы ед. Бод. 1,0-2,0 3,0-15 3,0-15
Витамин А мкг% 20-40 10-40 10-80
Витамин Е мг% 0,25-0,70 0,25-1,2 0,25-1,2
Витамин В3 мкг%   70-85 44-70
Витамин С мг% 0,5-0,7 0,2-1,0 0,2-1,0
Витамин В12 ммкг/мл 0,2-0,4    
Железо в сыворотке мкг% 160,0-200,0    
Йод (СБЙ) мкг% 4,0-6,0    
Цельная кровь
 
Гемоглобин
 
 
г%
 
 
10-12
 
 
8-10
 
 
8-12
Эритроциты млн/мкл 5,0-6,0 4,5-6,5 4,5-6,5
Гематокрит   38-46 30-46 30-46
Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) мм/час 15,0-25,0    
Лейкоциты тыс/мкл 12-16 8-12 10-15
Кетоновые тела мг% 1,0-2,0    
Витамин В12 мкг% 10-15 10-25 10-12
Витамин В2 мкг% 5,0-10,0 5,0-20,0 5-25
Глюкоза мг% 60-80 80-120 80-120
Фосфор неорганический мг% 5,0-7,0    
Медь мкг% 80-100 110-140 70-100
Цинк мкг% 200-300 110-140 100-150
Марганец мкг% 10-20 10-16 12-18
Кобальт мкг% 4,0-6,0 5-8,5 2,3-5,3
Магний мг% 3,4,0    
Печень
 
Витамин А
 
 
мг%
 
 
4,0-15,0
 
 
0,6-0,9
 
 
0,4-1,2

Справочное приложение № 2

Оптимальные параметры микроклимата для свиней.

№ пп Параметры микроклимата Свино-матки первого периода супорос-ности и холос-тые Свино-матки второго периода супорос-ности Свино-матки подсос-ные Порося-та-отъемы-шы Свиньи на откорме
1. Температура, 0С
2. Относительная влажность, %
3. Скорость движения воздуха, м/сек:
В холодный и переходный период года
 
 
0,3
 
 
 
0,15
 
 
0,15
 
 
0,2
 
 
0,3
  В теплый период года 1,0 1,0 0,4 0,6 1,0
4. Концентрация вредных газов:
Углекислого газа, %
 
 
0,2
 
 
0,2
 
 
0,2
 
 
0,2
 
 
0,2
  Аммиака, мг/м3
5. Естественная освещенность, ед. КГО 1,2 1,2 1,2 1,2 0,5
6. Отношение площади остекления к площади пола 1:10 1:10 1:10 1:10 1:20
7. Искусственная освещенность в зоне размещения животных, люкс 50-100 50-100 50-100 50-100 30-60

Справочное приложение № 3

Мероприятия по диагностике и профилактике паразитарных заболеваний.

1. Кишечные нематодозы.

Диагноз на кишечные нематодозы ставят на основании микроскопического исследования фекалий и посмертно при обнаружении взрослых гельминтов в кишечнике или их личинок (аскарид – в легких и печени, эзофагостом и трихоцефал в соскобах слизистой оболочки ободочной и слепой кишки соответственно).

Для обнаружения яиц гельминтов в фекальных массах применяют насыщенные растворы аммиачной селитры и плотностью 1,3, поваренной соли 1,2. Личинки аскарид из легочной и печеночной ткани выделяют по Берману.

Гельминтокопрологическому исследованию на кишечные нематодозы подлежат животные не моложе 2,5-3-месячного возраста в количестве не менее 10 % от имеющегося поголовья.

Эффективность дегельминтизации проверяют через 10 дней после ее проведения.

Для дегельминтизации применяют фенбендазол (в лекарственной форме 22,2 % панакура гранулята, 22 % фенкура) в дозе 0,005 г/кг массы животного в течение трех дней подряд групповым способом с кормами или в дозе 0,030 г/кг однократно, а также в дозе 0,015 г/кг в течение двух дней; мебендазол в дозе 0,0066 г/кг живой массы в течение трех дней подряд; ринтал – в дозе 0,005 г/кг однократно, ивермектин в дозе 0,0001 г/кг в течение двух дней.

Для повышения эффективности дегельминтизации наряду с антигельминтиками следует применять иммуностимуляторы (градекс в дозе 0,1 мг/кг, фумаровая кислота в дозе 0,1 г/кг).

Химиопрофилактику необходимо проводить в связи с тем, что поросята-сосуны заражаются кишечными нематодами с первых дней жизни. Раннюю химиопрофилактику проводят, применяя поросятам с 2-недельного возраста ежедневно в течение 45 дней групповым способом с кормами пиперазина адипината в дозе 0,12 г/кг. 20 %-ный тетрамизол гранулят в дозе 0,004 г/кг; фенбендазол один раз в неделю в дозе 0,001 г/кг или мебендазол в дозе 0,002 г/кг, а также ринтал в дозе 0,002 г/кг массы тела до отъема.

Высокоэффективным химиопрофилактическим действием обладает ивермектин, применяемый супоросным свиноматкам за неделю до опороса в дозе 0,0003 г/кг с кормом и через три недели после опороса в такой же дозе.

Оллуланоз.

Прижизненный диагноз ставят путем микроскопии рвотных масс больного животного, а посмертно – путем исследования соскобов со слизистой оболочки желудка в области фульдальных желез. Исследование соскобов проводят с использованием компрессория на трихинеллоскопе, трихинном микропроекторе или под микроскопом с предварительным перевариванием проб в искусственном желудочном соке по методу Ф.А. Волкова (1980) и осаждением гельминтов.

Для лечения применяют:

– ивомек в дозе 1 мл на 33 кг массы тела подкожно однократно;

– ринтал в дозе 5-10 мг/кг массы тела с кормом групповым способом однократно (по АДВ);

– пирантел в дозе 25 мг/кг массы тела с кормом групповым способом два раза в день (по АДВ);

– фенкур в дозе 15 мг/кг массы тела с кормом групповым способом однократно (по АДВ).

Смешанные паразитозы.

Для диагностики смешанных паразитозов свиней необходимо проводить комплексные исследования на гельминтозы и протозоозы. На гельминтозы (аскаридоз, эзофагостомоз, трихоцефалез, стронгилоидоз и др. нематодозы), а также на кокцидиоз диагностические исследования проводить по методу Г.А. Котельникова и В.М. Хренова (1974), на балантидиоз – методом нативного мазка и количественным методом по Н. Манжосу (1982). Гельминтокопроскопические исследования проводят на гельминтозы (аскаридоз, трихоцефалез, эзофагостомоз) через 50-60 дней после предполагаемого заражения, на стронгилятоз – через 8-10 дней, на кокцидиоз через 2-3 недели, на балантидиоз – через 1-2- недели.

Для профилактики паразитозов хряков обследуют на гельминтозы и протозоозы не реже 2 раза в год и при необходимости проводят лечебные мероприятия. В репродукторных, племенных и репродукторно-откормочных хозяйствах свиноматок обследуют на паразитозы и за месяц до опороса проводят химиотерапию с проверкой ее эффективности через 10 дней. При отсутствии возможности осуществлять преимагинальные дегельминтизации, поросят начинают обследовать и дегельминтизировать по достижении 2,5-3-месячного возраста.

Для профилактики смешанных паразитозов свиней используют антигельминтики широкого спектра действия: фенбендазол (в форме 22,2 % панакура или 22 % фенкур) в дозе 0,015 г/кг (по АДВ) два раза подряд; ринтал, мебенвет гранулят 10 %, ивермектин и др. в сочетании с фармазином в дозе 0,02 г/кг массы 2 раза в день в течение 3 дней или сочетание сульгина и сульфадимезина соответственно в дозах 0,075 г/кг и 0,04 г/кг массы в течение 4 дней; трихопол назначают поросятам весом 5-40 кг в дозе 0,25 г, свыше 40 кг – 0,5 г 2 раза в сутки в течение 3 дней; ампролиум в дозе 0,025-0,065 г/кг массы животного два раза в день три-четыре дня подряд и др.

Криптоспоридиоз.

Диагноз ставят на основании обнаружения ооцист криптоспоридий в фекалиях (методом нативного мазка и флотационные методы). Ооцисты выявляют в мазках после окрашивания из по Циль-Нильсену с докрашиванием 1%-ным бриллиантовым зеленым на 100 спирте, по Циль-Габбету, по Козлову.

Обследуют поросят с 3-4-дневного возраста, у павших поросят берут соскобы слизистой оболочки нижней части подвздошной кишки.

Для лечения криптоспоридиоза применяют перорально сульфадимезин в дозе 0,05 г/кг два раза в день и фумаровую кислоту в дозе 0,1 г/кг однократно в течение 5 дней, сульфадимезин в дозе 0,05 г/кг и ампролиум в дозе 0,2 г/кг два раза в день в течение 5 дней.

ПРИЛОЖЕНИЕ 6

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

ПО ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКОМУ ОБСЛЕДОВАНИЮ

Рекомендуемые страницы:

Воспользуйтесь поиском по сайту:

©2015- 2020 megalektsii.ru Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав.

Источник

Биохимические показатели крови свиней специализированных типов

Исследования проводились на чистопородных свиньях СТ и гибридном молодняке СТЧЛ. Общий белок сыворотки крови определяли рефрактометрически, белковые фракции – методом горизонтального электрофореза на бумаге, уровень общих липидов – по B. Swahn, I. Scand. Исследовали активность аминотрансфераз (АСТ и АЛТ) методом Рейтмана-Френкеля, щелочной фосфатазы – по методу O.A. Bessey e.a., креатинкиназы – по S.S. Kuby. Уровень кортизола определялся методом радиоиммунологического анализа, адреналина – флюориметрическим методом. Фагоцитарная активность устанавливалась по В.Ф. Матусевичу, бактерицидная активность – по методике О.В.Смирновой, Т.А. Кузьминой

Ключевые слова: кровь, свиньи, сыворотка крови, общий белок, аминотрансфераза, креатинкиназа, фагоцитарная активность

Как известно, кровь играет чрезвычайно важную роль в организме животных. Посредством крови осуществляется важнейшее свойство живой ткани – обмен веществ. Через кровь осуществляется гормональная и ферментативная регуляция, действуют защитные функции организма. Кровь во многом отражает как общее устройство организма, его конституциональные особенности, так и его физиологическое состояние и связанное с ним отправление жизненных функций (Е.В. Эйдригевич, В.В. Раевская, 1978).

Именно биохимические исследования крови заняли ведущее место в интерьерных исследованиях. В свиноводстве накоплен значительный материал по изучению морфологического состава крови в связи с уровнем и направлением продуктивности свиней. Уровень эритроцитов и гемоглобина свидетельствует об интенсивности метаболических процессов и энергии роста организма (Г.В. Максимов, 1995; В.А. Погодаев, 1996 и др.). Содержание лейкоцитов в крови, в свою очередь, служит показателем устойчивости организма к воздействию внешней среды.

свинья кровь белок фагоцитарный

Из биохимических показателей крови весьма подробно изучены белки. Именно белковый состав крови является одним из основных показателей, характеризующих уровень и направление продуктивности животных. Отмечено, что скороспелые свиньи отличаются повышенным содержанием общего белка в сыворотке крови (П.Е.Ладан, 1981; И.Н. Никитченко, 1978; Г.М.Бажов, Л.А.Бахирева, 1986; Г.В.Максимов, 1996; В.И.Степанов и др., 1997 и др.). Еще более высокая взаимосвязь установлена между количеством белковых фракций в сыворотке крови (альбуминов, б-,в-,г-) с интенсивностью роста свиней. В то же время нельзя не отметить более противоречивую картину взаимосвязей показателей белкового обмена с показателями мясности. Приведенные литературные данные свидетельствуют о том, что уровень белкового обмена в организме свиней положительно связан прежде всего с энергией роста.

В решении проблемы обеспечения населения Российской Федерации мясными продуктами по-прежнему значительная роль отводится свиноводству, как наиболее скороспелой отрасли животноводства. Однако кризисная ситуация, сложившаяся в сельском хозяйстве за последние 15 лет, привела к резкому спаду производства продукции свиноводства. Этот спад производства в свиноводстве сопровождался как сокращением численности поголовья, так и снижением продуктивности. Общее свинопоголовье снизилось почти на 50%. Высокий падеж, неудовлетворительные условия кормления и содержания, низкий уровень селекционно-племенной работы стали причиной снижения продуктивности животных. Средняя живая масса свиней, поступающих на убой, снизилась и составляет 55 кг.

В целом, сложившуюся в настоящее время ситуацию в свиноводстве можно характеризовать как критическую, требующую срочных организационных и экономических мероприятий и разработки долгосрочной программы развития свиноводства.

Таковыми задачами в области племенного свиноводства являются: совершенствование разводимых и создание высокопродуктивных генотипов свиней, испытание и апробация более эффективных сочетаний и внедрение их в товарное свиноводство, использование новых, высокоэффективных методов, позволяющих ускорить селекцию на повышение мясности и скороспелости, снижение затрат корма.

Исследования проводились в период 2007-2013 гг. на племенной ферме Федерального государственного учебного предприятия учхоз «Донское» Октябрьского района Ростовской области.

Для проведения опытов были отобраны по 20 свиноматок степного и донского мясных типов, по 2 хряка степного типа, донского типа, ландрас и пьетрен. Всего были сформированы 4 опытные группы.

Общий белок сыворотки крови определялся рефрактометрически, белковые фракции – методом горизонтального электрофореза на бумаге, уровень общих липидов – по B. Swahn, I. Scand (1952). Исследовалась активность аминотрансфераз (АСТ и АЛТ) методом Рейтмана-Френкеля (В.В. Меньшиков, 1973), щелочной фосфатазы – по методу O.A. Bessey e.a. (1946), креатинкиназы – по S.S. Kuby, H.A. Lardy (1954). Уровень кортизола определялся методом радиоиммунологического анализа (В.П. Радченков и др., 1985), адреналина – флюориметрическим методом (В.В. Меньшиков, 1969).

Фагоцитарная активность устанавливалась по В.Ф. Матусевичу (1970), бактерицидная активность – по методике О.В.Смирновой, Т.А. Кузьминой (1966).

Биохимические и морфологические показатели крови вполне объективно отражают сложные взаимосвязи организма животного с внешней средой. Выполняя многочисленные функции, кровь является наиболее информативной тканью живого организма. На ее количественный и качественный состав оказывают влияние многочисленные факторы: генотип животного, уровень кормления, условия содержания, возраст, пол, сезон года, физиологическое состояние. В своих исследованиях мы поставили задачу изучения целого ряда гематологических и морфологических показателей крови: уровня эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, общего белка и белковых фракций, ферментов переаминирования и дегидрирования крови.

В частности, морфологический состав крови позволяет достаточно точно судить о многих метаболических процессах в организме. Так, по количеству лейкоцитов можно определить уровень защитных сил в организме, поскольку эти клетки обладают способностью к фагоцитозу микроорганизмов, продуктам их распада и другим инородным частицам. Кроме этого, они выполняют антитоксическую функцию и выделяют вещества, стимулирующие регенерацию тканей. Наши исследования свидетельствуют об определенных различиях на этом уровне (табл. 1). В наших исследованиях наиболее высокими морфологическими показателями крови характеризовались гибридные животные генотипа СТЧЛ и ДМ-1ЧП. Так, превосходство свиней СТЧЛ и ДМ-1ЧП по количеству лейкоцитов в крови над чистопородными свиньями СТ составляло соответственно 1,0 (Р › 0,95) и 0,9 тыс./л (Р › 0,95), а над ДМ-1 – 1,7 (Р › 0,95) и 1,6 тыс./л (Р › 0,95). По количеству эритроцитов в крови превосходство гибридов СТЧЛ и ДМ-1ЧП над СТ было 1,1 (Р › 0,95) и 0,8 млн./л (Р › 0,95), над ДМ-1 – 0,7 и 0,5 млн./л соответственно.

И, наконец, по количеству гемоглобина превосходство гибридов над чистопородными свиньями было соответственно 5,1 (Р › 0,95) и 6,4 г/л (Р › 0,99); 4,4 (Р › 0,95) и 5,3 г/л (Р › 0,99). Различия между чистопородными подсвинками степного и донского типов были недостоверными. Тем не менее подсвинки СТ имели некоторое превосходство над ДМ-1 по количеству лейкоцитов (на 0,7 тыс./л), незначительно уступая последним по количеству эритроцитов (на 0,4 млн./л) и гемоглобина (на 0,9 г/л).

Повышенный уровень эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина в крови у гибридов обусловлен, по-видимому, эффектом гетерозиса у этих животных, отличавшихся более высоким уровнем защитных сил и окислительно-восстановительных реакций.

Важнейшей составной частью органического вещества являются белки. Белки сыворотки крови по целому ряду выполняемых физиологических функций делятся на несколько фракций. Так, альбумины имеют ярко выраженную физико-химическую активность, проявляют высокие гидрофильные свойства, участвуют в регуляции водного обмена, в поддержании осмотического давления и вязкости крови, выполняют транспортные функции. Альбумины, образуя комплексы с токсичными веществами, обезвреживают их, являются важным пластическим материалом, при необходимости используются как энергетический источник.

Белки глобулиновых фракций, в частности – и -глобулины принимают активное участие в поддержании осмотического давления крови. Кроме того,-глобулины активно проявляют защитные свойства. Наиболее сильно проявляют иммунные свойства -глобулины, т.к. они содержат антитела к возбудителям различных инфекционных болезней и являются основными носителями антител в организме.

Таблица 1 – Морфологические показатели крови свиней в 6 мес.

Группа

Лейкоциты, тыс./л

Эритроциты, млн./л

Гемоглобин, г/л

I. СТ

II. ДМ-1

III. СТЧЛ

IV. ДМ-1ЧП

  • 12,6±0,2
  • 11,9±0,2
  • 13,6±0,3
  • 13,5±0,3
  • 7,5±0,2
  • 7,9±0,2
  • 8,6±0,2
  • 8,4±0,2
  • 109,2±1,0
  • 110,1±1,0
  • 114,5±1,1
  • 115,6±1,2

Проведенные нами исследования позволили установить, что с медицинской точки зрения у подсвинков всех групп показатели белкового состава крови были в пределах нормы (табл. 2). По уровню общего белка в крови ведущее положение занимали подсвинки генотипа СТЧЛ (на 3,7 г/л больше ДМ-1); на 0,7 г/л им уступали свиньи СТ . Самый низкий уровень общего белка в сыворотке крови имели животные ДМ-1.

Примерно сходные тенденции наблюдались по количеству альбумина в сыворотке крови. Наибольшее его содержание зафиксировано у подсвинков генотипа СТЧЛ (на 2,8 г/л больше ДМ-1; Р › 0,95) и СТ (на 2,4 г/л больше ДМ-1; Р › 0,95). Подсвинки ДМ-1 также уступали остальным группам по этому показателю. Повышенное содержание альбуминов у свиней генотипа СТЧЛ и СТ подтверждается более высокой энергией роста этих животных на откорме. Примерно на одном уровне было содержание -глобулинов у свиней степного и донского типов, чистопородные подсвинки превосходили гибридов СТЧЛ и ДМ-1ЧП по этому показателю на 1,0 – 1,1 г/л (Р › 0,95) и 0,9 – 1,0 г/л (Р › 0,95) соответственно. По уровню – глобулинов в сыворотке крови различия были незначительными и недостоверными. Несколько выше этот показатель был у свиней СТ и ДМ-1ЧП, ниже – у ДМ-1. Наиболее высокий уровень -глобулинов отмечен у помесей генотипа СТЧЛ (на 1,4 – 1,7 г/л больше СТ и ДМ-1; Р › 0,95) и ДМ-1ЧП (на 1,1 – 1,4 г/л больше чистопородных подсвинков; Р › 0,95). Более высокий уровень -глобулинов у гибридов свидетельствует о более высоких защитных возможностях этих животных к выработке антител. В целом, животные СТЧЛ и СТ, имевшие наибольшую энергию роста, отличались и более высоким уровнем белкового обмена в крови.

Таблица 2 – Белковый состав сыворотки крови опытных свиней

Показатели белкового состава, г/л

СТ

ДМ-1

СТЧЛ

ДМ-1ЧП

Общий белок

Альбумины

  • -глобулины
  • -глобулины

-глобулины

  • 74,0±0,7
  • 25,5±0,4
  • 13,4±0,3
  • 14,7±0,3
  • 20,0±0,3
  • 71,0±0,6
  • 23,1±0,4
  • 13,3±0,3
  • 14,5±0,2
  • 19,7±0,4
  • 74,7±0,8
  • 25,9±0,5
  • 12,4±0,3
  • 14,6±0,3
  • 21,4±0,4
  • 72,6±0,7
  • 24,1±0,4
  • 12,3±0,2
  • 14,7±0,3
  • 21,1±0,3

По-прежнему актуальными остаются вопросы раннего прогнозирования продуктивности. В этом плане перспективными являются ферменты сыворотки крови, катализирующие различные обменные процессы в организме. Ферменты переаминирования аминотрансферазы являются одними из ключевых ферментов азотистого обмена. И аспартатаминотрансфераза (АСТ), и аланинаминотрансфераза (АЛТ) осуществляют белково-углеводный и жировой обмен, катализирует синтез основных аминокислот. Величина активности этих ферментов генетически детерминирована и тесно связана с уровнем продуктивности животных.

Еще два фермента сыворотки крови креатинкиназа (КК) и лактатдегидрогеназа (ЛДГ) тесно связаны с энергетическими процессами в мышечной ткани, очень чутко реагируют на действие различных стресс-факторов и могут использоваться в качестве индикаторов качества мяса.

Наиболее высокую активность АСТ и АЛТ имели гибридные подсвинки генотипа СТЧЛ (на 0,28; Р › 0,999 и 0,22 мкмоль/мл; Р › 0,99 больше ДМ-1). Подсвинки СТ и ДМ-1 имели примерно одинаковый уровень активности аминотрансфераз (табл. 3). Самая низкая активность АСТ и АЛТ зафиксирована у животных ДМ-1. Более высокая активность аминотрансфераз у гибридов СТЧЛ является не случайной, поскольку именно эти животные наиболее интенсивно росли, у них происходили усиленные обменные процессы, связанные с синтезом белка для наращивания мышечной ткани.

Еще более отчетливыми были генотипические различия по активности КК и ЛДГ сыворотки крови. Достоверно более высокий уровень и КК (на 18,6 мкмоль/мл больше ДМ-1; Р › 0,999) и ЛДГ (на 47,7 мкмоль/мл; Р › 0,999 выше ДМ-1) имели гибридные подсвинки СТ ЧЛ. Несколько ниже уровень активности креатинкиназы и лактатдегидрогеназы наблюдался у чистопородных свиней СТ (на 14,1 мкмоль/мл; Р › 0,99 и 42,4 мкмоль/мл; Р › 0,999 больше ДМ-1).

Таким образом, более интенсивный рост молодняка генотипа СТЧЛ и СТ обусловил и более высокий уровень активности трансаминаз, креатинкиназы, и лактатдегидрогеназы у этих свиней, поскольку эти ферменты существенно ускоряют течение обменных процессов в организме животных. Проведенные исследования подтверждают перспективность использования ферментов, прежде всего креатинкиназы и лактатдегидрогеназы, тесно связанных с процессами мышечного обмена, в качестве маркеров мясной продуктивности.

Таблица 3 – Показатели активности АСТ, АЛТ, КК и ЛДГ в сыворотке крови подопытных свиней

Группы

АСТ, мкмоль/мл

АЛТ, мкмоль/мл

КК, мкмоль/мл

ЛДГ, мкмоль/мл

I. СТ

II. ДМ-1

III. СТЧЛ

IV. ДМ-1ЧП

  • 2,03±0,03
  • 1,86±0,02
  • 2,14±0,03
  • 2,02±0,03
  • 1,89±0,02
  • 1,77±0,02
  • 1,99±0,03
  • 1,91±0,02
  • 65,2±2,2
  • 51,1±1,9
  • 69,7±2,3
  • 56,9±2,0
  • 297,6±3,2
  • 255,2±2,7
  • 302,9±3,5
  • 276,1±2,9

Таким образом, более интенсивный рост молодняка генотипа СТЧЛ и СТ обусловил и более высокий уровень активности трансаминаз, креатинкиназы, и лактатдегидрогеназы у этих свиней, поскольку эти ферменты существенно ускоряют течение обменных процессов в организме животных. Проведенные исследования подтверждают перспективность использования ферментов, прежде всего креатинкиназы и лактатдегидрогеназы, тесно связанных с процессами мышечного обмена, в качестве маркеров мясной продуктивности.

По результатам проведенных исследований были сделаны следующие выводы:

  • 1. Чистопородные животные СТ и гибридный молодняк СТЧЛ отличается повышенным содержанием гемоглобина, общего белка и белковых фракций, более высокой активностью аминотрансфераз, креатинкиназы и лактатдегидрогеназы, что является свидетельством интенсивного обмена веществ у этих быстрорастущих свиней.
  • 2. Помесные свиньи генотипа СТЧЛ и подсвинки ДМ-1 отличаются более высоким уровнем фагоцитарной и бактерицидной активности крови. В целом, животные всех генотипов имеют хорошо развитые механизмы клеточной и гуморальной защиты.

Список использованной литературы

  • 1. Асаев Э.Р., Тагиров Х.Х. Оценка продуктивных качеств свиней крупной белой породы и ее помесей с ландрасами//Зоотехнияю. – 2007. – №5 – с. 23-24.
  • 2. Лодянов В.В. Продуктивность и технологические характеристики качества мясного сырья NOR, PSE и DFD специализированных пород и типов свиней. Автореферат на соискание ученой степени к.с.-х.наук. ДонГАУ, п. Персиановский, 2005. 24с.
  • 3. Козликин А.В. Анализ физико-химических свойств мяса и шпика чистопородных и помесных свиней. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета = Polythematic online scientific journal of Kuban State Agrarian University. 2011. № 73. С. 524-533.
  • 4. Тариченко А.И. Прогнозирование продуктивных качеств свиней новых мясных типов. Диссертация на соискание ученой степени доктора сельскохозяйственных наук / Персиановский, 2000.
  • 5. Ганзенко Е.А. Продуктивность свиней степного и донского типов и их помесей с хряками ландрас и пьетрен. Труды Кубанского государственного аграрного университета. 2008. Т. 1. № 15. С. 108-113.

References

  • 1. Asaev Je.R., Tagirov H.H. Ocenka produktivnyh kachestv svinej krupnoj beloj porody i ee pomesej s landrasami//Zootehnijaju. – 2007. – №5 – s. 23-24.
  • 2. Lodjanov V.V. Produktivnost’ i tehnologicheskie harakteristiki kachestva mjasnogo syr’ja NOR, PSE i DFD specializirovannyh porod i tipov svinej. Avtoreferat na soiskanie uchenoj stepeni k.s.-h.nauk. DonGAU, p. Persianovskij, 2005. 24s.
  • 3. Kozlikin A.V. Analiz fiziko-himicheskih svojstv mjasa i shpika chistoporodnyh i pomesnyh svinej. Politematicheskij setevoj jelektronnyj nauchnyj zhurnal Kubanskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta = Polythematic online scientific journal of Kuban State Agrarian University. 2011. № 73. S. 524-533.
  • 4. Tarichenko A.I. Prognozirovanie produktivnyh kachestv svinej novyh mjasnyh tipov. Dissertacija na soiskanie uchenoj stepeni doktora sel’skohozjajstvennyh nauk / Persianovskij, 2000.
  • 5. Ganzenko E.A. Produktivnost’ svinej stepnogo i donskogo tipov i ih pomesej s hrjakami landras i p’etren. Trudy Kubanskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta. 2008. T. 1. № 15. S. 108-113.

Источник