Гематологические показатели крови телят норма

Любой организм в соответствии с генотипом даже при наличии экстремальных условий обладает способностью сохранять постоянство гомеостаза. Очевидно, поэтому гематологические, биохимические и другие показатели различных систем отличаются стабильностью, подвергаясь под воздействием внешней среда лишь модификационной изменчивости, проявляющейся в незначительных отклонениях от нормы. На гематологические, биохимические и другие показатели существенное влияние оказывает не только физиологическое состояние животного (возраст, беременность, продуктивность), но и условия кормления, содержания, эксплуатации, а также среда обитания. Вместе с тем картина крови сохраняет свои индивидуальные и видовые особенности.
Наиболее научно обоснованным и присущим современному этапу развития биологической пауки, в том числе медицины и ветеринарии, является математический метод установления нормативов, основанный па теории вероятности с использованием исходных материалов, охватывающих результаты исследований больших групп разного возраста, пола, продуктивности здоровых животных, находящихся в различных климатических зонах.
При изучении особенностей вариационного распределения гематологических показателей было установлено, что для большинства из ниx характерно распределение, близкое к нормативному. Лишь в распределении эозинофилов, палочкоядерных нейтрофилов, ретикулоцитов и СОЭ имеется некоторая асимметрия. Для гематологических показателей, как уже принято в биологических исследованиях, нормативы должны иметь уровень достоверности не менее 0,05, т. е. норма — 95% здоровых животных и только в 5% случаев возможны отклонения, причины которых не известны. К сожалению, эти положения при установлении нормативов выполнены не всегда, так как были получены намного раньше, чем была разработана теория вероятности. Поэтому в предложенных многочисленными авторами нормативах морфологического состава кропи для ратных видов животных представлены только средине значения и их экстремальные отклонения (табл. 2, 3).

Гематологические показатели у сельскохозяйственных и домашних животных

Гематологические показатели у сельскохозяйственных и домашних животных

Определенные трудности вызывает вопрос о необходимости создания отдельных нормативов в зависимости от географических зон, различающихся природно-экономическими условиями. По-видимому, только в местностях, резко отличающихся, например, по высоте над уровнем моря, средней годовой температуре, разводимому типу скота, целесообразно иметь свои нормативы, что очень важно для изучения краевой патологии. Вместе с тем независимо от условий для объективной оценки результатов исследований необходимо знать особенности нормальной картины крови определенного вида животного.
Лошадь. Данный вид животного имеет гранулоцитарный профиль крови, когда нейтрофилы преобладают над остальными клетками. Специфическая зернистость в эозинофилах является наиболее крупной из аналогичных клеток всех животных. Эритроциты образуют цепочки, как и у человека, так называемые монетные столбики. СОЭ выражена и довольно высокая. Следует отметить, что лошади резко отличаются по показателям красной крови в зависимости от типа. Рысистые лошади (горячие) имеют более высокое содержание в крови эритроцитов и уровень гемоглобина, чем рабочие (холодные). В норме у них в крови присутствуют в незначительных количествах ретикулоциты, число которых увеличивается при различных анемиях.
Крупный рогатый скот. До 1 мес после рождения телята имеют нейтрофильный профиль крови при повышенном содержании палочкоядерных форм нейтрофилов, а в последующее время у крупного рогатого скота преобладают лимфоциты над гранулоцитами. СОЭ не выражена, поэтому обычно методически не исследуется. Среди эритроцитов отмечается анизоцитоз. Ретикулоциты и полихроматофилы в норме и даже при патологии в крови не появляются.
Овца. Данный вид животных имеет наиболее выраженный лимфоцитарный профиль крови с самого рождения. Зрелые нейтрофилы по сравнению с крупным рогатым скотом более сегментированы, число которых составляет обычно 3— 4 фрагмента. Количество эритроцитов по сравнению с крупным рогатым скотом несколько выше, но они намного меньше. Ретикулоциты отсутствуют. В норме анизоцитоз, пойкилоцитоз, СОЭ не выражена.
Коза. У данного вида наиболее высокие показатели красной крови, которые завысят от мест их обитания. Высокогорные козы имеют более высокое содержание в крови эритроцитов и уровень гемоглобина. Эритроциты очень мелкие, ретикулоциты отсутствуют. СОЭ также не выражена.
Свинья. Количество лейкоцитов в крови свиней несколько выше, чем у других видов сельскохозяйственных животных. Лимфоциты являются преобладающими клетками белой крови. Среди нейтрофилов число палочкоядерных форм клеток повышено. Ретикулоциты и полихроматофилы постоянно присутствуют как в норме, так при патологии.
Собака. Как и лошадь, собака имеет нейтрофильный профиль крови. В норме в небольших количествах даже у взрослых особей, встречаются полихроматофилы и ретикулоциты, а иногда эритроциты с тельцами Жоли и даже нормобласты. У данного вида выражены, как и у лошади, породные различия в составе красной крови. Гончие собаки имеют более высокое содержание эритроцитов и уровень гемоглобина.
Кошка. Количество лейкоцитов у данного вида животного колеблется в широких пределах (от 10 до 20 тыс. клеток в 1 мкл крови). Соотношение гранулоцитов и лимфоцитов почти равное. В отличие от других видов млекопитающих у кошек гранулы в эозинофилах расположены густо и часто имеют палочковидную форму неодинаковой величины.
Кролик. Нейтрофилы у кролика содержат очень крупную зернистость напоминающую по размерам и окраске зернистость эозино-филов, и поэтому эти клетки были названы псевдоэозинофилами. В картине красной крови, особенно в молодом возрасте, много полихроматофилов и реттисулоцитов.
Птицы. Количество лейкоцитов у всех видов птиц по сравнению с млекопитающими животными в несколько раз выше и колеблется в широких пределах (от 20 до 40 тыс. в 1 мкл крови). Профиль крови обычно лимфоцитарный. Зернистость в нейтрофилах, которая, как и у кролика, называется псевдоэозинофилами, в эозинофилах довольно сходная и представлена многочисленными эозинофильными гранулами различной величины и формы. Однако в эозинофилах гранулы обычно круглые и реже палочковидные, у псевдоэозинофилов, наоборот, гранулы, как правило, палочковидные с заострением на концах. Эритроциты у всех птиц содержат ядро и имеют эллипсовидную форму. Нередко встречаются полихромные эритроциты и клетки с витальной зернистостью. Тромбоциты также содержат ядро, т. е. являются настоящими клетками, а не пластинками, как у млекопитающих. Тромбоцита у птиц — самые мелкие клетки крови, приближающиеся по размеру к малым лимфоцитам.
Причины различий в морфологическом составе крови у различных видов животных не вполне ясны, но, вероятно, обусловлены особенностями обмена веществ. В практическом отношении важно значь, что животные с различным профилем крови (лимфоцитарный, нейтрофильный) несколько иначе реагируют на воздействие внутренних и внешних факторов. В частности, у лошадей, собак реакция па воспалительные процессы довольно сильная и выражается обычно в резком лейкоцитозе в результате значительного увеличения количества нейтрофилов со сдвигом «влево», вплоть до развития лейкемоидной реакции миелоидного типа (например, при хрониосепсисе). У крупного рогатого скота, наоборот, воспалительные процессы, даже хрониосепсис, не вызывают в крови значительных изменений, хотя реакция также однотипна, т. е. лейкоцитоз с нейтрофилезом и регенеративным сдвигом.
Следует также отметить, что у животных с лимфоцитарным профилем крови чаще наблюдаются лейкозы лимфоидной формы, а у животных с нейтрофильной картиной кропи преимущественно встречаются миелолейкозы. У кур, эритроциты которых имеют ядра, кроме того, встречаются эритробластозы, последние пока не описаны у других сельскохозяйственных животных.

    • Функциональные методы выделения и идентификации Т- и В-лимфоцитов крови
    • Определение фагоцитарной активности лейкоцитов
    • Определение некоторых физико-химических показателей крови
    • Методы лейкоконцентрации
    • Подсчет лейкоцитарной формулы и других цитограмм
    • Приготовление цитологических препаратов, методы их фиксации и окраски
    • Пункция кроветворных органов (техника и инструментарий)
    • Получение проб крови и отдельных их компонентов
    • Клиническая иммуногематология
    • Система свертывания крови и противосвертывающие механизмы

Источник

Группа П О К А З А Т Е Л И
Эритроциты, тыс./л Гемоглобин, г/л Гематокрит, л/л Общий белок, г/л 
До введения препарата
6,17±0,55 117,3±9,60 0,30±0,03 38,2±3,20 
6,16±0,34 113,8±11,10 0,28±0,02 35,0±1,30 
Через 10 дней
5,75±0,13* 107,0±8,80 0,32±0,02 53,2±0,71 
4,88±0,18 81,8±6,60 0,29±0,08 51,8±0,49 
Через 20 дней
5,66±0,29 109,1±7,90 0,37±0,03 47,2±1,31 
4,82±0,07 91,40±1,80 0,34±0,02 46,8±1,10 

Примечание: * – Р < 0,05

Наряду с улучшением гематологических показателей, применение деструмина сопровождалось повышением концентрации лизоцима, одного из факторов неспецифической резистентности организма, а также способствовало улучшение усвоения железа, нормализации обмена цинка и магния (табл.33). Причем, если уровень железа у телят контрольной группы на 10 день их жизни снизился более чем в два раза, то у опытных только на 21,2%.

Таким образом, проведенный опыт убедительно показал высокую лечебную эффективность деструмина при зобной болезни новорожденных телят, а также его положительное влияние на общий обмен веществ организма.

Таблица 33.

Содержание лизоцима, цинка, магния и железа в крови телят.

Группа П О К А З А Т Е Л И
Лизоцим, % Цинк, мкмоль/л Магний, ммоль/л Железо, ммоль/л 
Перед введением препарата
2,84±0,24 32,31±6,36 17,34±0,90 6,47±0,76 
2,98±0,26 29,72±2,76 17,75±0,49 6,22±0,32 
Через 10 дней после введения препарата
3,61±0,08* 24,57±1,20 16,90±0,45 4,86±0,60* 
3,01±0,07 21,41±0,70 14,88±0,58 2,72±0,19 
Через 20 дней после первого введения препарата
4,16±0,15* 26,48±1,35 15,75±0,44 5,02±0,36 
2,85±0,11 23,47±1,60 14,44±0,54 3,73±0,39 

Дальнейшие исследования препарата, подтвердили его высокую лечебно-профилактическую эффективность при энзоотическом зобе телят, что позволило внедрить его в производство. Уже в течение ряда лет деструмин выпускается Минским заводом ветеринарных препаратов. При внутримышечном введении деструмин восполняет дефицит йода и магния в организме животных, улучшает обмен веществ, способствует ускорению роста и устойчивости молодняка к другим болезням, поэтому его применяют с целью профилактики йодной недостаточности у коров и телят, повышения жизнеспособности новорожденного молодняка. Препарат вводят стельным коровам двукратно, через 1,5-2 месяца после осеменения и за 35-25 дней до отела в дозе 10 мл. Телятам деструмин инъецируют на 1-2 день жизни из расчета 2,5 мл на 10 кг живой массы, и при необходимости повторяют в той же дозе через 7-10 дней. В рекомендуемых дозах препарат не вызывает у животных осложнений и не оказывает побочных действий Противопоказанием к применению деструмина является предварительная парентеральная обработка животных другим. Йодсодержащими препаратами.

Также высокую эффективность показал разработанный в БелНИИЭВ им. С.Н.Вышелесского препарат седифиз.

Эффективность применения седифиза с целью профилактики зоба, беломышечной болезни и гепатодистрофии изучали на комплексе колхоза « Герой труда» Глубокского района Витебской области. По принципу аналогов (живая масса, пол, условия кормления и содержания матерей) были сформированы 4 группы поросят-сосунов таким образом, что под каждой свиноматкой находились животные всех групп. В 2-4 дневном возрасте поросятам 1-2 групп внутримышечно ввели по 1,5 мл , а 3 – 2 мл седифиза. Животным 4 группы инъецировали 3 мл ДИФ –3. В 15-дневном возрасте поросятам 2 группы введение седифиза повторили. До назначения препаратов, в 10 и 25-дневном возрасте у пяти животных каждой группы брали кровь для лабораторных исследований. В крови определяли количество лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобина, общего белка и его фракций, содержание селена, железа, меди, цинка, связанного с белком йода, а также выводили лейкоцитарную формулу. В течение всего опыта за поросятами вели ежедневное наблюдение, учитывали заболеваемость, общее состояние животных. В конце опыта определяли среднесуточный прирост живой массы в каждой группе за время эксперимента. Павшие животные вскрывались для определения причин гибели.

Результаты исследований показали, что седифиз позволяет увеличить в крови поросят содержание железа, йода и селена, а также обладает профилактической эффективностью в отношении алиментарной анемии, зоба и гепатодистрофии. Так, при исследовании крови до введения препаратов, содержащие указанных выше элементов в сыворотке крови составляло соответственно 3,64 ± 0,12 мг/л, 41,49 ±1,83 мкг/л и 9,0 ± 0,11 г/л при норме 50-100 мкг/л для селена, 40-60 мкг/л для йода и 2,0-4,0 мг/л для железа.

При исследовании сыворотки крови через 10 и 20 дней после введения препаратов, у поросят 1 группы (1,5 мл седифиза однократно) содержание железа увеличилось соответственно до 4,99 ± 0,63 и 3,66 ± 0,22 г/л; П – (1,5 мл седифиза двукратно, с интервалом 15 дней) – до 5,33± 0,59 и 5,52 ± 0,32 г/л; Ш (2,0 мл седифиза однократно) – до 5,42 ± 0,51 и 4,58 ± 0,22 г/л; 1У (3 мл ДИФ-3 однократно) – 5,05 ± 0,38 и 4,07 ± 0,09 г/л. Увеличение концентрации общего йода в сыворотке крови у поросят в те же сроки характеризовались следующими данными по группам: в 1 – 74,14±1.72 и 44,27 ± 1,20 мкг/л; во П – 73,62 ±1,02 и 68,52 ± 2,31 мкг/л, в Ш – 78,61 ± 1,69 и 45,28 ± 3,53 мкг/л и в 1У – 69,76 ± 2,26 и 39,13 ± 2,61 мкг/л. Таким образом, даже после однократного введения седифиза концентрация общего йода и железа в сыворотке крови остаются в пределах физиологической нормы практически до отъема поросят.

Повышение количества селена в сыворотке крови поросят опытных групп указывают на создание его запасов в организме и подтверждается следующими данными по группам при исследовании через 10 и 20 дней после первого введения препаратов: в 1 – 99,87 ± 2,60 и 52,52 ± 1,50 мкг/л, во П – 100,56 ± 4,23 и 105,59 ± 3,03 мкг/л, в Ш – 115,97 ± 6,26 и 60,78 ± 1,58 мкг/л в 1У – 44,25 ± 1,89 и 36,34 ± 1,83 мкг/л.

Гематологические показатели во всех группах значительных различий между собой не имели, за исключением достоверного повышения количества эритроцитов у поросят 1 и лейкоцитов во П группах на 24 день жизни в сравнении с контролем соответственно на 13,2 и 39,7%, что объясняется в первом случае стимулирующим действием селена на эритропоэз, а во втором- повторным введением препарата. Изменения в лейкограмме в большей степени были обусловлены возрастом животных и не имели существенных различий между группами, хотя у поросят П группы отмечено относительное увеличение количества сегментоядерных нейтрофилов.

При определении соотношения белковых фракций установлено возрастное относительное увеличение альбуминов у поросят всех групп, а также больший уровень -глобулинов и гаптоглобулинов животных 1-Ш групп, т.е обработанных селеносодержащим препаратом, что указывает на усиление белоксинтезирующей функции печени под действием селена.

Наиболее устойчивыми к заболеваниям оказались животные 1 группы (заболеваемость 20%); во II заболеваемость составила 23,8%, в Ш – 25% и в 1У – 28,6%. Соответственно сохранность в 1-1У группах составила 95,0%, 85,7%, 90,0% и 85,7%.

Анализ полученных результатов показал, что однократное применение поросятам седифиза в дозе 1,5 мл на животное позволяет профилактировать болезни, обусловленных дефицитом йода, железа и селена.

Препарат ДИФ-3 является комплексным соединением железа и йода, содержит 48,0-50 мг/мл железа и 4,8-5,6 мг/мл йода.

Представляет собой стерильную, нелетучую непрозрачную жидкость темно-коричневого цвета с легким специфическим запахом, хорошо смешивается с водой. Возможно наличие небольшого количества осадка.

ДИФ-3 способствует нормализации обмена веществ, восполняет дефицит железа и йода в организме, стимулирует эритропоэз, воспроизводительную способность свиноматок и коров, повышает устойчивость животных к заболеваниям, способствует ускорению роста.

ДИФ-3 применяется для профилактики недостаточности йода (зобной болезни) железодефицитной анемии молодняка сельскохозяйственных животных, повышения воспроизводительной способности свиноматок и коров, а также жизнеспособности новорожденных поросят и телят, профилактики послеродовых заболеваний (задержания последов, эндометриты).

Препарат вводят внутримышечно в область бедра или шеи свиньям и крупа- телятам и коровам в дозах:

· Поросятам –2,0-3,0 мл на голову на 3-5 день жизни; при необходимости инъекцию повторяют через 7-10 дней в той же дозе;

· Свиноматкам – за 8-12 дней до осеменения и за 20-30 дней до опороса по 8-10 мл на голову;

· Телятам- на 1-2 день жизни по 5 мл на голову однократно;

· Коровам- за 35-25 дней до отела в дозе 7-10 мл на голову однократно;

Противопоказаний к применению препарата не установлено.

Продукция животноводства после применения ДИФ-3 используется без ограничений, однако, следует иметь в виду, что окрашивание тканей в месте инъекции сохраняется до 30 дней.

Рекомендуемые страницы:

Воспользуйтесь поиском по сайту:

©2015- 2020 megalektsii.ru Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав.

Источник

Архив номеров / Номер 6, 2008 годРаспечатать

В.В. Мосейчук, A.M. Ермаков ГНУ СКЗНИВИ Россельхозакадемии

Введение.

Одной из наиболее актуальных в современной ветеринарии является проблема борьбы с респираторными болезнями телят, которые по массовости и распространению занимают ведущее место среди всех пато­логий. В общей заболеваемости телят болезни органов дыхания составляют от 3,6 до 5,4%, среди них превалируют инфекционные заболевания, вызванные вирусом герпеса и бактериями рода Chlamydophila (2,3, 5).

По нашим данным, на долю этой ассоциации в хозяйствах Ростовской области приходится более 30% всех респираторных заболеваний.

Несмотря на достигнутые успехи, в диагностике и лечении респираторных болезней остается еще много нерешенных воп­росов, слабо изучены морфологические и биохимические изме­нения крови при инфекционном ринотрахеите у телят.

Инкубационный период при инфекционном ринотрахеите может длиться от нескольких дней до 1 месяца. У телят инфекци­онный ринотрахеит проявляется в виде бронхопневмоний, поли-и моноартритов (в одной из форм или в смешанной форме), но чаще – в форме бронхопневмонии. У молодняка развивается чаще катаральная реже катарально-гнойная или крупозная пнев­мония с изменениями в интерстиции. У больных бронхопневмо­нией телят отмечают лихорадку, угнетение, анорексию, истощение и глухой кашель. Полиартриты и моноартриты встречаются реже. Иногда телята рождаются с пораженными суставами.

У коров болезнь проявляется рождением мертвых и слабых телят, рождением уродов, абортами, цервицитами, вестибулова-гинитами, эндометритами, маститами. Аборты встречаются толь­ко у коров с первой стельностью. Рождение мертвых и слабых телят также встречается у коров с первой стельностью и у коров, дающих сомнительную реакцию в РДСК. Нередко у инфициро­ванных коров рождаются клинически здоровые телята. Специ­фическим признаком инфекционного ринотрахеита у коров яв­ляется сыпь на слизистой влагалища в виде бугорков. Сначала бугорки имеют размеры с маковое зерно и еле заметны, их окраска красная. Через некоторое время они увеличиваются в размерах, становятся прозрачными и имеют красно-оранжевый цвет (везикулы). Впоследствии бугорки достигают размера про­сяного зерна и приобретают беловатую окраску (гранулемы). Слизистая оболочка влагалища гиперемирована вокруг бугор­ков или гиперемирована полностью. Лечение такого вагинита в течение 3 недель цинк-ихтиоловой мазью и фуразолидоновыми палочками не дает эффекта, что дает возможность исключить кампилобактериоз и трихомоноз. Однако, бугорковую сыпь на слизистой влагалища имеют не все серопозитивные коровы. Бу­горковая сыпь наиболее характерна для коров, дающих сомнительную реакцию в РДСК.

Более характерным для инфекционного ринотрахеита среди коров являются не абор­ты, а рождение мертвых, слабых и нежизне­способных телят.

Наибольшее распространение среди телят имеет респираторная форма инфекци­онного ринотрахеита, менее распространены фибринозные полиартриты и моноартриты и еще реже встречаются смешанные формы (пневмония и артрит). Гастроэнтериты не учитывались, так как в хозяйстве не ведется их учет, а также из-за того, что малая харак­терность изменений в кишечнике не позво­ляет поставить диагноз на инфекционный ри-нотрахеит. На протяжение нескольких лет мы изучали особенности течения ринотрахеита и его динамику в хозяйствах Ростовской облас­ти. Почти у всех телят в 2001 году встречалась диспепсия, однако телят, больных инфекцион­ным ринотрахеитом могло оказаться не бо­лее 17% (если учитывать, что при инфекционном ринотрахеите у телят очень редко поражается только один кишечник). Уменьше­ние случаев заболевания телят инфекционным ринотрахеитом в 2000 году связано со строгим выполнением противоэпизоо-тических мероприятий (в связи с ликвидацией лептоспироза). Увеличение в 2001 году случаев заболевания телят инфекцион­ным ринотрахеитом связано с вводом большого количества пер­вотелок в молочное стадо и нестрогим выполнением противо-эпизоотических мероприятий. Среди телят не регистрировались случаи энцефалитов и конъюнктивитов или их учет в хозяйстве не велся.

Впервые диагноз на инфекционный ринотрахеит был постав­лен серологическим методом (РДСК) в 1996 году. Для постановки диагноза коровам и молодняку старше 6 месяцев использовали серологический метод (РДСК) и клинические исследования. Для постановки диагноза телятам возрастом до 6 месяцев использо­вали клинические исследования, данные патологоанатомических вскрытий, результаты микроскопии мазков-отпечатков из патоло­гического материала и исследование мазков из носовой полости в прямом методе РДСК. Кроме того, учитывали эпизоотологические и эпидемиологические данные.

Цель исследования: изучить основные морфологические и биохимические изменения крови у телят при инфекционном ри­нотрахеите.

Материалы и методы. Диагностику ИРТ проводили с по­мощью набора для амплификации ДНК Bovine herpesvirus тип 1 (CatN° Н 2073. Lot N° 20107). Для установления тяжести и осо­бенностей течения ИРТ всем животным про­водили морфологический и биохимический анализ крови. Морфологический анализ крови включал: определение числа эритроцитов и лейкоцитов в сетке камеры Горяева, опреде­ление концентрации гемоглобина гемиглобин-цианидным методом, гематокрита по методи­ке, предложенной И. И. Архангельским и Л. П. Сошенко (1993), определение скорости оседа­ния эритроцитов (СОЗ), выведение лейкограммы по общепринятым методикам [1,2,3].

Биохимический анализ крови включал определение следующих показателей: щелоч­ной фосфатазы по ферментативному гидролизу n-нитрофенилфосфата, активности аспартата-минотрансферазы и аланинаминотрансферазы по методу Райтмана-Френкеля, а-амилазы – по Каравею, глюкозы – орто-толуидиновым методом, мочевины – с помощью биолахема-теста, белка – с помощью биуретовой реакции, билирубина – по методу Ендрашика-Грофа, аль­бумина – по реакции с бромкрезоловым зеле­ным, креатинина – методом Яффе [2,3,4].

Результатыисследования.

Нами проведены морфологичес­кие исследования крови телят, больных инфекционным ринотра­хеитом (ИРТ), при различном клиническом течении заболевания (табл. 1).

Таблица 1. Гематологические показатели у телят, больных ИРТ (n=40)

Показатели

Клини­чески здоровые

Болтные

Течение болезни

легкое

среднее

тяжелое

крайне тяжелое

Эритроциты, 1012/л

7,3±0,14

5,7±0,21

4,1±0,32

3,11±0,13

3,1±0,36

Гемоглобин, г/л

165±2,5

145±4,31

121±3,38

111,2±4,1

90±3,11*

Гематокрит

0,45±0,1

0,35±0,02

0,31±0,01

0,30±0,01

0,29±0,01*

Цветовой показатель

1,07±0,02

0,94±0,01

1,00±0,02

1,11±0,02

0,95±0,01

COЭ, мм/ч

8,0±1,1

11,0±1,3

1,4±1,8

18,0±1,12

45,0±2,3*

Примечание: Р< 0,001 относительно здоровых телят

Морфологические показатели крови характеризовались не­значительным снижением числа эритроцитов при легком и сред­нем течении и выраженным снижением при тяжелом и крайне тяжелом течении ИРТ.

При очень тяжелом течении число эритроцитов и количес­тво гемоглобина снижалось соответственно до 3,1+0,36*1012/ л и 111,2±4,1 г/л при норме у клинически здоровых телят 7,3±0,14*1012/л и 165±2,5 г/л, степень достоверности очень высокая (Р<0,001). Снижение числа эритроцитов и количества ге­моглобина обусловлено депрессией красного костного мозга уси­ливающейся гипоксией, как прямой, так и ишемической, вследс­твие нарушения работы сердечно-сосудистой системы.

Отмечены значительные отклонения в СОЭ у телят, больных ИРТ, до 45±2,3 при норме 8,0±1,1 мм/ч.

У телят, больных ИРТ, число лейкоцитов в крови снижалось при легком течении до 7,2±109/л с дегенеративным сдвигом ней-трофилов (табл. 2).

Таблица 2. Лейкограмма телят, больных инфекционным ринотрахеитом (n=40)

Показатели

Клинически здоровые

Больные

Точение болезни

легкое

среднее

тяжелое

крайне тяжелое

Лейкоциты, *109/л

9,66±0,2

7,2±0,23

5,1±0,17

6,1±1,09

5,2±0,31

Эозинофилы, %

5,5±0,2

2,15±0,2

4,3±0,16

0,3±0,1

0,1±0,01

Юные, %

3,2±0,09

3,1±0,14

Палочкоядерные нейтрофилы, %

4,8±0,14

7,4±0,18

16,5±0,7

120,4±0,34

13,4±0,45

Сегментоядерные нейтрофилы,%

32,7±1,4

23,1±2,1

13,6±0,91

6,4±0,8

6,3±0,25

Лимфоциты, %

52,4±1,2

58,9±6,1

60,1±7,1

67,1±5,19

71,1±3,21

Моноциты, %

4,6±0,12

4,7±0,484

4,9±0,12

1,9±0,01

1,6±0,12

По мере развития болезни число лейкоцитов продолжало снижаться за счет сегментоядерных нейтрофилов с дегенератив­ным сдвигом ядра. Лимфопения прогрессировала по мере рас­пространения воспалительного процесса в легких и отображала тяжесть течения болезни. Число моноцитов у телят с легкой и средней тяжестью ИРТ было в пределах нормы, и соответствова­ло показателям здоровых животных, тогда как при тяжелом течении развивалась моноцитопения, а при очень тяжелом течении их число снижалось до 1,6±0,11%.

Биохимические исследования крови проводили в первый день постановки диагноза, затем через каждые 5 суток до выздо­ровления. Определяли уровень сиаловых кислот, фибриногена, С-реактивного белка и лактатдегидрогеназы. Уровень этих показате­лей в крови у больных животных увеличивался по мере развития заболевания (табл. 3).

Таблица 3. Биохимические показатели у телят, больных инфекционным ринотрахентом, (n=40)

Показатели

Клини­чески здоровые

Больные

Точение болезни

легкое

среднее

тяжелое

крайне тяжелое

Сиаловые кислоты, ммоль/л

1,910,06

2,6±0,1

3,1±0,05

3,8±0,06

5,2±0,08

Фибриноген, г/л

3,2±0,08

5,3±0,1

8,8±0,09

10,2±0,09

14,1±0,1

С-реактивиый белок, кресты

1±0,01

1,8±0,01

2,4±0,02

3,7±0,01

Лактдегидрогеназа, Е/л

156±2,6

283±2,2

390±2,3

465±3,2

621±5,5

Общий белок, г/л

66,7±0,8

66,1±0,8

65,9±0,7

65,5±0,6

64,9±0,9

Альбумины, г/л

26,4±0,5

25,4±0,5

24,6±0,31

23,6±0,7

22,1±0,8

Глобулины, г/л

39,9±0,6

40,8±0,6

41,4±0,5

41,8±0,8

42,8±0,6

α1-глобулины

3,3±0,2

3,8±0,2

4,1±0,2

4,7±0,2

5,4±0,3

α1-глобулины

7,1±0,3

7,9±0,3

8,3±0,2

8,9±0,3

9,2±0,3

β-глобулины

8,7±0,2

8,4±0,2

8,1±0,3

8,0±0,2

8,2±0,4

γ-глобулины

20,9±0,3

20,6±0,2

20,5±0,3

20,2±0,З

19,1±0,2

Острота воспаления по лабораторным характеристикам кро­ви сопровождается повышением показателей фибриногена, СОЭ, С-реактивного белка и лактатдегидрогеназы. В биохимическом составе крови при крайне тяжелом течении болезни отмечено по­вышение уровня сиаловых кислот в 2,7 раза, фибриногена в 4,4 раза, лактатдегидрогеназы в 3,9 раза по сравнению с клинически здоровыми телятами.

Увеличение уровня сиаловых кислот обусловлено усилением нарушений тканевого метаболизма и деполимеризации гликопро-теиновых комплексов, появлением в крови большого количества продуктов расщепления белково-углеводных комплексов. Явля­ясь маркером неспецифического или бактериального воспале­ния, уровень сиаловых кислот объективно указывает на тяжесть течения процесса в легких.

Протеинограмма характеризовалась значительным умень­шением содержания альбуминов и увеличением уровня глобули­нов на фоне незначительного снижения общего белка. При ин­фекционном ринотрахеите легкой и средней тяжести количество общего белка мало изменялось, тогда как при тяжелом и крайне тяжелом течении количество общего белка снижалось до 64,9+0,9 г/л (при норме 66,7+0,8 г/л) в основном за счет уменьшения аль­буминов до 22,1+0,8 г/л. Такая диспротеинемия обуславливается усилением биосинтеза белков острой фазы (гаптоглобулин, альфа-1-антитрипсин, С-реактивный белок, фибриноген) и подавлением синтеза альбумина (токсического или компенсаторного характе­ра) в гепатоцитах.

В начале болезни диспротеинемия характеризовалась уве­личением al- и а 2-глобулинов, а к концу 15 сут течения инфек­ционный ринотрахеите незначительно увеличивалось количество Y-глобулинов. Как известно, в эту фракцию входят иммуноглобу­лины. При очень тяжелом течении инфекционный ринотрахеите наблюдалось уменьшение количества у-глобулинов. В этот период болезни большинство телят погибало.

Таким образом, определяя фракции белка на 10-15 сутки течения инфекционного ринотрахеита, можно прогнозировать гибель животного, связанную с недостаточной выработкой иммуноглобулинов. К этому периоду течения инфек­ционного ринотрахеита уровень общего белка существенно снижался в основном за счет альбуминовой фракции.

Изменения протеинограммы при инфек­ционном ринотрахеите достаточно характерны и стереотипно повторяются при правильной постановке диагноза. При разных формах ин­фекционного ринотрахеита протеинограмма меняется по-разному, не только в зависимости от формы, но и от тяжести течения заболева­ния. Следует отметить, что общее количество белка меняется не со степенью обезвожива­ния организма, а коррелирует с гематокрит-ным показателем. Вместе с тем, гематокрит не может служить объективным показателем обезвоживания, так как при инфекционном ринотрахеите может появляться анемия с одновременным обезвоживанием. Для объ­ективной интерпретации протеинограммы необходимо вводить еще один показатель – объем циркулирующей плазмы и рассчиты­вать количество циркулирующего протеина, что усложняет выводение лабораторного ин­декса тяжести.

Вместе с тем, не учитывать изменения белкового состава плазмы при инфекционном ринотрахеите нельзя, поэтому в формулу были введены количественные показатели белков острой фазы (С-ре­активный белок, фибриноген). Увеличение концентрации этих белков в крови указывает на общие изменения протеинограммы, тяжесть течения воспалительного процесса.

Вывод.

Таким образом, по гематологическим и биохимичес­ким изменениям можно судить о тяжести течения ИРТ у телят, оп­ределяя фракции белка на 10-15 сутки заболевания, также можно прогнозировать гибель животного. К этому периоду течения ин­фекционного ринотрахеита уровень общего белка существенно снижался в основном за счет альбуминовой фракции.

Литература

  1. Борисович Ю.Ф. Инфекционные болезни животных: Справочник/Сост. Ю.Ф. Борисович, Л.В. Кириллов; Под ред. Д.Ф. Осидзе. -М.: Агропромиздат, 1987. – с.141-150
  2. Крюков Н. Н., Инфекционные болезни крупного рогато­го скота, М., 1974, с. 83-94
  3. Панасюк Е.Л., Матяш В.И., Токунова ТА Смешанные вирусно-бактериальные нфекции: особенности клиники, диагнос­тики, лечения //Сучаш шфекцм.-2007. – N°2. -С. 44-50
  4. Сюрин В. Н., Фомина Н. В., Частная ветеринарная виру­сология, М., 1979. -с. 61-67
  5. Armstrong J.A., Pereira H.G., Andrewes С. Observations of the virus of infectious bovine rhinotracheitis and its affinity with the herpesvirus group, Virology, 1961,14,276-285.

Гематологические показатели крови телят норма
 
Гематологические показатели крови телят норма
 

Департамент ветеринарии Краснодарского краяАссоциация Практикующих Ветеринарных Врачей

Источник