Инфекционная анемия лососевых рыб

Информация

Инфекционная анемия атлантического лосося (ИААЛ, Infectious salmon anemia, ISA) — острое, тяжело протекающее заболевание постсмолтов лосося, сопровождающееся сильно выраженной анемией и высокой смертностью рыб.

Возбудители

Возбудитель заболевания — оболочечный РНК-геномный вирус диаметром 45—130 нм — предварительно отнесен к семейству ортомиксовирусов. Недавно вирус удалось выделить от больных рыб на новой постоянной линии клеток SHK-1, полученной из ткани головной почки атлантического лосося. Другие испытанные линии клеток лососевых ( AS, RTG-2 и CHSE-214) к вирусу нечувствительны. Вирус гибнет при низкой или высокой рН, при тепловой обработке (около 60°С) гибнет в течение 5 минут. Вирус сохраняется при низкиз температурах, в замороженном виде (-4 – -15°С) не менее 14 суток.

Эпизоотология

Впервые обнаруженная в одном из хозяйств юго-западной части Норвегии болезнь распространилась более чем на 100 рыбоводных фермах. Она считается одной из наиболее опасных для атлантического лосося и наносит значительный ущерб его товарному производству. Обычно заболевание у постсмолтов развивается спустя некоторое время после перевода их на морскую воду. Гибель составляет 50 %, но иногда достигает 100 %. Полагают, что проходная кумжа S. trutta L. и радужная форель формируют резервуар инфекции в море. При экспериментальном заражении эти рыбы не заболевали, но значительное время (кумжа более 7 мес) являлись вирусоносителями и передавали заболевание подсаженному на контакт атлантическому лососю. Переносчиками вируса являются копеподы Caligus elongatus и Lepeophtheirus salmonis, паразитирующие на поверхности тела лососей. В естественных условиях воротами инфекции являются жабры, далее вирус проникает во внутренние органы рыб, поражая, главным образом, клетки эндотелия кровеносных сосудов, клетки ге-мопоэтической ткани почек и лимфоциты. Он обнаруживается в крови, слизи и содержимом кишечника. Заболевание часто провоцируется стресс-факторами.

Клинические признаки и патогенез

Заболевание характеризуется следующими признаками: потемнением кожных покровов и точечными кровоизлияниями на них, сильной анемией жабр и внутренних органов экзофтальмией, наличием асцита, увеличением и кровенаполненностью печени и селезенки, кровенаполненностью слизистой кишечника, петехиями на висцеральной жировой ткани. При гистологическом исследовании обнаруживают характерный для ИААЛ очаговый геморрагический некроз печени. В селезенке наблюдаются отложения гемосидерина. Отмечают лейко- и эритропению (гематокрит падает ниже 10), увеличение числа незрелых и дегенерирующих эритроцитов, снижение содержания сывороточного белка. Устойчивость к ИААЛ лосося из разных природных популяций сильно варьирует, однако существует мнение, что селекция на устойчивость не решит проблемы, а лишь замаскирует ее, поскольку едва ли позволит освободиться от вирусоносительства.

Диагноз

Его ставят на основании клинических, патологоанатомических и эпизоотологических данных и результатов вирусологических исследований.

Меры борьбы

При обнаружении заболевания на хозяйство накладывают карантин и рыбу в нем уничтожают, это единственное средство борьбы с распространением этого заболевания. На морских лососевых фермах Норвегии для борьбы с паразитирующими на лососе копеподами практикуется подсадка к нему местного губана (Labridae), поскольку последний использует их в пищу. Это, очевидно, можно рассматривать и как биологический способ профилактики заболевания. Запрещена перевозка рыб из одного места в другое. Лекарств и вакцин от болезни нет.

Вирусные заболевания рыб

Вирусная геморрагическая септицемия
Инфекционный некроз гемопоэтической ткани
Весенняя виремия карпа
Инфекционный некроз поджелудочной железы
Оспа карпа
Герпесвирусное заболевание канального сома
Герпесвирусные инфекции лососевых
Вирусные болезни осетровых
Лимфоцистис
Вирусный некроз эритроцитов
Синдром эритроцитарных телец-включений
Болезнь поджелудочной железы атлантического лосося
Инфекционная анемия атлантического лосося или ISA
Дерматофибросаркома судака
Стоматопапиллома угрей
Эпидермальная папиллома сома
Папилломатоз атлантического лосося
Язвенный некроз кожи лососевых

Источник

Ветеринарный энциклопедический словарь

(Anaemia infectiosa salmonidae), вирусная болезнь рыб, характеризующаяся поражением кроветворных органов, Ц. н. с. и развитием тяжёлой формы анемии. Зарегистрирована в странах Зап. и Вост. Европы и в США в СССР (спорадические случаи).

Возбудитель И. а. л. – неклассифицированный вирус. Источник возбудителя инфекции – больные рыбы, их выделения, икра. Резервуар возбудителя — трупы погибших рыб, инфицированные ложе и вода неблагополучного водоёма. Восприимчивы к заражению все возрастные группы радужной и ручьевой форели, а также каспийский лосось. У производителей болезнь обостряется в преднерестовый период и заканчивается их гибелью. Инкубационный период не установлен. Болезнь протекает остро и хронически. При остром течении болезни рыба вялая, отказывается от корма, всплывает на поверхность воды, неподвижно стоит у берега и не реагирует на внешние раздражители. На теле — диффузные тёмные пятна; проявляются экзофтальмия, некротич. распад плавниковых перепонок. Перед гибелью рыба совершает стремительные винтовые движения или стоит в толще воды головой вниз и нередко погибает в таком положении. При хронич. течении наблюдаются кровоизлияние в радужную оболочку глаз, значительная экзофтальмия и выпадение одного или обоих глазных яблок из орбит, кожа — тёмно-лиловой окраски. Хронич. течение болезни длится 1—3 мес. Большинство больных рыб погибает. При вскрытии при остром течении И, а. л. наблюдают в брюшной полости скопление жидкости тёмно-коричневого цвета; в желудке серовато-тёмную слизь, в кишечнике отрубевидную массу. Стенки кишечника гиперемированы, анус выпячен, из него выделяется желтоватая слизь, селезёнка тёмно-вишнёвого цвета, уменьшена, печень жёлтая или серо-жёлтая с гиперемированными участками, сердечная мышца бледная, дряблая. Отмечают гидроперикардит. Почки тёмно-серые, с белыми полосами на поверхности, рыхлые, отёчные, легко разрушаются. В головном мозге кровоизлияния. Кровь бледно-розовая, медленно свёртывается. Мускулатура белая или с жёлтым оттенком, иногда с отдельными кровоизлияниями. При хронич. течении И. а. л. у производителей иногда наблюдают также сильную гиперемию ястыков. Диагноз ставят на основании эпизоотол., клинич. и патологоанатомич. данных, гистол. исследований (обнаружение эозинофильных телец-включений в почках, печени и кишечнике) и результатов биопробы на восприимчивых рыбах (лосось, форель).

Лечение не разработано. Профилактика осн. на своевременном выполнении комплекса вет.-сан., рыбоводно-мелиоративных и зоотехнич. мероприятий.

Лит.: Канаев А. И., Инфекционные заболевания лососевых, М., 1973.

ИНФЕКЦИОННАЯ АНЕМИЯ ЛОШАДЕЙ — вирусная болезнь, характеризующаяся рецидивирующей лихорадкой, анемичностью видимых слизистых оболочек, отёками туловища и конечностей и длительным вирусоносительством…
Сельско-хозяйственный энциклопедический словарь
ФУРУНКУЛЁЗ ЛОСОСЁВЫХ — см. Аэромонозы рыб. …
Сельско-хозяйственный энциклопедический словарь
БАКТЕРИАЛЬНАЯ БОЛЕЗНЬ ЛОСОСЁВЫХ — бактериа́льная боле́знь лососёвых, то же, что коринебактериоз лососёвых…
Ветеринарный энциклопедический словарь
ИНФЕКЦИОННАЯ АНЕМИЯ ЛОШАДЕЙ — Рис. 1. Кривые температуры и количества эритроцитов при остром течении инфекционной анемии лошадей. Рис. 1. Кривые температуры и количества эритроцитов при остром течении инфекционной анемии лошадей…
Ветеринарный энциклопедический словарь
ИНФЕКЦИОННЫЙ НЕКРОЗ ПОДЖЕЛУДОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ ЛОСОСЁВЫХ — инфекцио́нный некро́з поджелу́дочной железы́ лососёвых, острая вирусная болезнь молоди лососевых рыб, характеризующаяся расстройством координации движений, потемнением кожного покрова, поражением паренхиматозных…
Ветеринарный энциклопедический словарь
ЯЗВЕННАЯ БОЛЕЗНЬ ЛОСОСЁВЫХ — я́звенная боле́знь лососёвых, см. Гемофилоз…
Ветеринарный энциклопедический словарь
ИНФЕКЦИОННАЯ АНЕМИЯ — лошадей, хронич. вирусная болезнь. Симптомы: лихорадка, анемия, длит. вирусоносительство. Больных лошадей убивают…
Естествознание. Энциклопедический словарь
аллергия инфекционная — А. к возбудителям инфекционных болезней или продуктам их жизнедеятельности…
Большой медицинский словарь
антигенемия инфекционная — наличие в крови антигенных компонентов возбудителя инфекции, обусловленное инфекционным процессом…
Большой медицинский словарь
аутоинтоксикация инфекционная — А. бактериальными токсинами при аутоинфекции или продуктами распада тканей при инфекционных заболеваниях…
Большой медицинский словарь
Маточные стада лососевых рыб — “…..
Официальная терминология
Сиг рыбы из семейства лососевых* — род рыб из семейства лососевых , выделяемый некоторыми исследователями вместе с белорыбицей и нельмой в особое семейство сиговых …
Энциклопедический словарь Брокгауза и Евфрона
Сиг, рыбы из семейства лососевых — род рыб из семейства лососевых , выделяемый некоторыми исследователями вместе с белорыбицей и нельмой в особое семейство сиговых …
Энциклопедический словарь Брокгауза и Евфрона
Форель рыба из семейства лососевых — рыба из семейства лососевых , принадлежащая к роду лосось …
Энциклопедический словарь Брокгауза и Евфрона
Инфекционная анемия — лошадей, инфекционное заболевание, характеризующееся постоянной или перемежающейся лихорадкой, анемией, поражением сердечно-сосудистой системы и длительным нахождением вируса в организме…
Большая Советская энциклопедия
ИНФЕКЦИОННАЯ АНЕМИЯ — ИНФЕКЦИОННАЯ анемия лошадей – хроническая вирусная болезнь. Симптомы: лихорадка, анемия, длительное вирусоносительство. Больных лошадей убивают…
Большой энциклопедический словарь

Инфекционная резистентность
Резистентность, или устойчивость, к антибиотикам — явление наследственное. Из устойчивой клетки стафилококка возникает устойчивое к ним потомство. В 1959 году была открыта особая форма резистентности, передаваемая другим микроорганизмам и

Семейство лососевых

Форель ручьевая
Внешне форель похожа на лосося. Обычно средняя особь форели в длину достигает 25–50 см, ее масса составляет 900 г. Некоторые особенно крупные экземпляры могут весить более 3 кг. В озерах (например, в Иссык-Куль в Киргизии) можно встретить

3.26. Инфекционная больница

Если твой сосед по парте
Стал источником заразы,
Обними его — и в школу
Две недели не пойдешь.
Г. Остер

Больница, какой бы замечательной она ни была, в принципе не способствует появлению положительных эмоций у рядового гражданина нашей страны.

История десятая: Персистенция верхом, или Инфекционная анемия лошадей
Много тысячелетий сопровождает лошадь человека по тернистым дорогам истории. С древнейших времен участвуя в нелегком труде хлебопашца, она помогала расчищать леса под пашни, сеять хлеб, собирать

Инфекционная анемия лошадей
Инфекционная анемия лошадей – вирусная болезнь непарнокопытных, характеризующаяся чередованием дней высокой температуры с днями нормальной температуры, анемией (малокровием) и длительным вирусоносительством.Возбудитель заболевания –

Источник

1. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Под ред. академика РАН Д.К. Львов. Москва: МИА, 2013. 1200 с.

2. Lvov D.K., Shchelkanov M.Yu., Alkhovsky S.V., Deryabin P.G. Zoonotic Viruses of Northern Eurasia. Taxonomy and Ecology. Elsevier Academic Press, 2015. 440 p.

3. Salama N.K., Murray A.G. A comparison of modelling approaches to assess the transmission of pathogens between Scottish fish farms: the role of hydrodynamics and site biomass // Prev. Vet. Med. 2013. V. 108. N4. P. 285–293. doi: 10.1016/j.prevetmed.2012.11.005.

4. Christiansen D.H., Østergaard P.S., Snow M., Dale O.B., Falk K. A low-pathogenic variant of infectious salmon anemia virus (ISAV-HPR0) is highly prevalent and causes a non-clinical transient infection in farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.) in the Faroe Islands // J. Gen. Virol. 2011. V. 92. Pt. 4. P. 909–918. doi: 10.1099/vir.0.027094-0.

5. Kibenge M.J., Iwamoto T., Wang Y., Morton A., Routledge R., Kibenge F.S. Discovery of variant infectious salmon anaemia virus (ISAV) of European genotype in British Columbia, Canada // Virol. J. 2016. V. 13. N 3. doi: 10.1186/s12985-015-0459-1.

6. Gustafson L., Ellis S., Bouchard D., Robinson T., Marenghi F., Warg J., Giray C. Estimating diagnostic test accuracy for infectious salmon anaemia virus in Maine, USA // J. Fish Dis. 2008. V. 31. N 2. P. 117–125. doi: 10.1111/j.1365-2761.2007.00873.x.

7. Godoy M.G., Suarez R., Lazo E.S., Llegues K.O., Kibenge M.J., Wang Y., Kibenge F.S. Genetic analysis and comparative virulence of infectious salmon anemia virus (ISAV) types HPR7a and HPR7b from recent field outbreaks in Chile // Virol. J. 2014. V. 11. N. 204. doi: 10.1186/s12985-014-0204-1.

8. Thorud K., Djupvik H.O. Infectious anaemia in Atlantic salmon (Salmo salar L.) // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 1988. N 8. P. 109–111.

9. Временная инструкция по борьбе с заболеванием лососевых рыб инфекционной анемией. Утверждена 01.12.1970 главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР. М.: Минсельхоз, 1970. 5 с.

10. Hastein T., Hill B.J., Winton J.R. Successful aquatic animal disease emergency programmes // Rev. Sci. Tech. 1999. V. 18. P. 214–227.

11. Hovland T., Nylund A., Watanabe K., Endresen C. Observation of infectious salmon anemia virus in Atlantic salmon, Salmo salar L. // J. Fish Dis. 1994. V. 17. P. 291–296.

12. Dannevig B.H., Falk K., Krogsrud J. Infectivity of internal tissues of Atlantic salmon, Salmo salar L., experimentally infected with the aetiological agent of infectious salmon anemia (ISA) // J. Fish. Dis. 1994. V. 17. P. 613–622.

13. Dannevig B.H., Falk K., Press C.M. Propagation of infectious salmon anaemia (ISA) virus in cell culture // Vet. Res. 1995. V. 26. N 5–6. P. 438–442.

14. Falk K., Dannevig B.H. Demonstration of infectious salmon anaemia (ISA) viral antigens in cell cultures and tissue sections // Vet. Res. 1995. V. 26. N 5–6. P. 499–504.

15. Dannevig B.H., Falk K., Namork E. Isolation of the causal virus of infectious salmon anaemia (ISA) in a long-term cell line from Atlantic salmon head kidney // J. Gen. Virol. 1995. V. 76. Pt. 6. P. 1353–1359. doi: 10.1099/0022-1317-76-6-1353.

16. Sommer A.I., Mennen S. Multiplication and haemadsorbing activity of infectious salmon anaemia virus in the established Atlantic salmon cell line // J. Gen. Virol. 1997. V. 78. Pt. 8. P. 1891–1895. doi: 10.1099/0022-1317-78-8-1891.

17. Mjaaland S., Rimstad E., Falk K., Dannevig B.H. Genomic characterization of the virus causing infectious salmon anemia in Atlantic salmon (Salmo salar L.): an Orthomyxo-like virus in a teleost // J. Virol. 1997. V. 71. N 10. P. 7681–7686.

18. Krossoy B., Hordvik I., Nilsen F., Nylund A., Endresen C. The putative polymerase sequence of infectious salmon anemia virus suggests a new genus within the Orthomyxoviridae // J. Virol. 1999. V. 73. N 3. P. 2136–2142.

19. Альховский С.В., Львов Д.К., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Львов Д.Н., Львов С.C., Самохвалов Е.И., Гительман А.К., Ботиков А.Г., Краснослободцев К.Г. Генетическая характеристика вируса Баткен (BKNV – Batken virus) (Orthomyxoviridae, Thogotovirus), изолированного из иксодовых клещей Hyalomma marginatum Koch, 1844 и комаров Aedes caspius Pallas, 1771 и Culex hortensis Ficalbi, 1889 в Средней Азии // Вопросы вирусологии. 2014. Т. 59. N 2. С. 33–37.

20. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Аристова В.А., Гительман А.К., Самохвалов Е.И., Ботиков А.Г. Таксономический статус вируса Тюлёк (Tyulek – TLKV) (Orthomyxoviridae, Quaranjavirus, группа Кваранфил), изолированного в Киргизии из клещей Argas vulgaris Filippova, 1961 (Argasidae) из норовых биотопов с гнёздами птиц // Вопросы вирусологии. 2014. Т. 59. N 2. С. 28–32.

21. Щелканов М.Ю., Федякина И.Т., Прошина Е.С., Пономаренко Р.А., Львов Д.Н., Чумаков В.М., Галкина И.В., Бурцева Е.И., Львов Д.К. Таксономическая структура Orthomyxoviridae: современное состояние и ближайшие перспективы // Вестник РАМН. 2011. N 5. С. 12–19.

22. Hastings T., Olivier G., Cusack R., Bricknell I., Nylund A., Binde M., Munro P., Allan C. Infectious salmon anaemia // Bull. Euro. Assoc. Fish Pathol. 1999. V. 19. P. 286–288.

23. Cook-Versloot M., Griffiths S., Cusack R., McGeachy S., Ritchie R. Identification and characterisation of infectious salmon anaemia virus (ISAV) haemagglutinin gene highly polymorphic region (HPR) type 0 in North America // Bull. Euro. Assoc. Fish Pathol. 2004. V. 24. P. 203–208.

24. McBeath A.J., Bain N., Snow M. Surveillance for infectious salmon anaemia virus HPR0 in marine Atlantic salmon farms across Scotland // Dis. Aquat. Organ. 2009. V. 87. P. 161–169. doi: 10.3354/dao02128.

25. Fourrier M., Lester K., Markussen T., Falk K., Secombes C.J., McBeath A., Collet B. Genotype promote viral fusion and activation by an ubiquitous host protease // PLoS One. 2015. V. 10. N 10. P. e0142020. doi: 10.1371/journal.pone.0142020.

26. Markussen T., Sindre H., Jonassen C.M., Tengs T., Kristoffersen A.B., Ramsell J., Numanovic S., Hjortaas M.J., Christiansen D.H., Dale O.B., Falk K. Ultra-deep pyrosequencing of partial surface protein genes from infectious salmon anaemia virus (ISAV) suggest novel mechanisms involved in transition to virulence // PLoS One. 2013. V. 8. P. e81571. doi: 10.1371/journal. pone.0081571.

27. Cardenas C., Carmona M., Gallardo A., Labra A., Marshall S.H. Coexistence in field samples of two variants of the infectious salmon anemia virus: a putative shift to pathogenicity // PLoS One. 2014. V. 9. P. e87832. doi: 10.1371/journal.pone.0087832.

28. Kibenge F.S.B., Garate O.N., Johnson G., Arriagada R., Kibenge M.J.T., Wadowska D. Isolation and identification of infectious salmon anaemia virus (ISAV) from Coho salmon in Chile // Dis. Aquat. Org. 2001. V. 45. P. 9–18. doi: 10.3354/dao045009.

29. MacWilliams C., Johnson G., Groman D., Kibenge F.S.B. Morphologic description of infectious salmon anaemia virus (ISAV)-induced lesions in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) compared to Atlantic salmon (Salmo salar) // Dis. Aquat. Org. 2007. V. 78. P. 1–12. doi: 10.3354/dao01866.

30. Nylund A., Wallace C., Hovland T. The possible role of Lepeophtheirus salmonis (Kroyer) in the transmission of infectious salmon anemia // In: Pathogens of wild and farmed fish: sea lice / Eds.: G. Boxshall, D. Defaye. – Chichester: Ellis Harwood Ltd., 1993. P. 367–373.

31. Gustafson L., Ellis S., Robinson T., Marenghi F., Endris R. Efficacy of emamectin benzoate against sea lice infestations of Atlantic salmon, Salmo salar L.: evaluation in the absence of an untreated contemporary control // J. Fish Dis. 2006. V. 29. N 10. P. 621–627. doi: 10.1111/j.1365-2761.2006.00761.x.

32. Gustafson L., Antognoli M., Lara Fica M., Ibarra R., Mancilla J., Sandoval del Valle O., Enriquez Sais R., Perez A., Aguilar D., Madrid E., Bustos P., Clement A., Godoy M.G., Johnson C., Remmenga M. Risk factors perceived predictive of ISA spread in Chile: applications to decision support // Prev. Vet. Med. 2014. V. 117. N 1. P. 276–285. doi: 10.1016/j.prevetmed.2014.08.017.

33. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Грипп: история, клиника, патогенез // Лечащий врач. 2011. N 10. С. 33–38.

34. Weli S.C., Aamelfot M., Dale O.B., Koppang E.O., Falk K. Infectious salmon anaemia virus infection of Atlantic salmon gill epithelial cells // Virol. J. 2013. V. 10. N 5. doi: 10.1186/1743-422X-10-5.

35. Aamelfot M., McBeath A., Christiansen D.H., Matejusova I., Falk K. Infectious salmon anaemia virus (ISAV) mucosal infection in Atlantic salmon // Vet. Res. 2015. V. 46. N 120. doi: 10.1186/s13567-015-0265-1.

36. Hellebø A., Vilas U., Falk K., Vlasak R. Infectious salmon anemia virus specifically binds to and hydrolyzes 4-O-acetylated sialic acids // J. Virol. 2004. V. 78. N 6. P. 3055–3062.

37. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Коронавирусы человека (Nidovirales, Coronaviridae): возросший уровень эпидемической опасности // Лечащий врач. 2013. N 10. P. 49–54.

38. Nerette P., Stryhn H., Dohoo I., Hammell L. Using pseudogold standards and latent-class analysis in combination to evaluate the accuracy of three diagnostic tests // Prev Vet Med. 2008. V. 85. N 3-4. P. 207–225. doi: 10.1016/j.prevetmed.2008.01.011.

39. Kibenge M.T., Opazo B., Rojas A.H., Kibenge F.S. Serological evidence of infectious salmon anaemia virus (ISAV) infection in farmed fishes, using an indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) // Dis. Aquat. Organ. 2002. V. 51. N 1. P. 1–11. doi: 10.3354/dao051001.

40. Hoare R., Thompson K.D., Herath T., Collet B., Bron J.E., Adams A. Development, characterisation and application of monoclonal antibodies for the detection and quantification of infectious salmon anaemia virus in plasma samples using luminex bead array technology // PLoS One. 2016. V. 11. N 7. P. e0159155. doi: 10.1371/journal.pone.0159155.

41. O’Shea B., Wadsworth S., Pino Marambio J., Birkett M.A., Pickett J.A., Mordue Luntz A.J. Disruption of host-seeking behaviour by the salmon louse, Lepeophtheirus salmonis, using botanically derived repellents // J. Fish Dis. 2016. doi: 10.1111/jfd.12526.

42. Dempster T., Kristiansen T.S., Korsøen Ø.J., Fosseidengen J.E., Oppedal F. Technical note: modifying Atlantic salmon (Salmo salar) jumping behavior to facilitate innovation of parasitic sea lice control techniques // J. Animal Sci. 2014. V. 89. N 12. P. 4281–4285. doi: 10.2527/jas.2011-3894.

43. Leclercq E., Davie A., Migaud H. Delousing efficiency of farmed ballan wrasse (Labrus bergylta) against Lepeophtheirus salmonis infecting Atlantic salmon (Salmo salar) post-smolts // Pest Manag. Sci. 2014. V. 70. N 8. P. 1274–1282. doi: 10.1002/ps.3692.

44. Lauscher A., Krossøy B., Frost P., Grove S., Kö-nig M., Bohlin J., Falk K., Austbø L., Rimstad E. Immune responses in Atlantic salmon (Salmo salar) following protective vaccination against infectious salmon anemia (ISA) and subsequent ISA virus infection // Vaccine. 2011. V. 29. N 37. P. 6392–6401. doi: 10.1016/j.vaccine.2011.04.074.

45. Wolf A., Hodneland K., Frost P., Hoeijmakers M., Rimstad E. Salmonid alphavirus-based replicon vaccine against infectious salmon anemia (ISA): impact of immunization route and interactions of the replicon vector // Fish Shellfish Immunol. 2014. V. 36. N 2. P. 383–392. doi: 10.1016/j.fsi.2013.12.018.

46. Rivas-Aravena A., Fuentes Y., Cartagena J., Brito T., Poggio V., La Torre J., Mendoza H., GonzalezNilo F., Sandino A.M., Spencer E. Development of a nanoparticle-based oral vaccine for Atlantic salmon against ISAV using an alphavirus replicon as adjuvant // Fish Shellfish Immunol. 2015. V. 45. N 1. P. 157–166. doi: 10.1016/j.fsi.2015.03.033.

47. Chang C.J., Robertsen C., Sun B., Robertsen B. Protection of Atlantic salmon against virus infection by intramuscular injection of IFNc expression plasmid // Vaccine. 2014. V. 32. N 36. P. 4695–4702. doi: 10.1016/j.vaccine.2014.05.059.

48. Caruffo M., Maturana C., Kambalapally S., Larenas J., Tobar J.A. Protective oral vaccination against infectious salmon anaemia virus in Salmo salar // Fish Shellfish Immunol. 2016. V. 54. P. 54–59. doi: 10.1016/j.fsi.2016.03.009.

Источник