Норма биохимии крови у обезьян

БЭБИМ – в печати

Показатели физиологических параметров обезьян Масаса fasciсularis, иммунизированных  против вируса краснухи в сочетании с адъювантами на основе германия.

Карал-оглы Д.Д.*, Агрба В.З., * Лаврентьева И.Н.**, Амбросов И.В., *** Матело С.К.*** Чугуев Ю.П., *Гварамия И.А.,* Гвоздик Т.Е.,* Мухаметзянова Е.И .*

*Федеральное государственное бюджетное учреждение « Научно-исследовательский институт медицинской приматологии» Российской академии медицинских наук

**Федеральное бюджетное учреждение науки “Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Пастера”

*** ООО «ВДС Фарма»

_____________________________________________________________________________

На 26 Масаса fascicularis обоего пола были изучены клинический статус, гематологические, биохимические показатели, а также аллергенное действие германий органических соединений, использованных в качестве адъювантов в комплексе с препаратом из вакцинного штамма вируса краснухи  «Орлов» и препаратом сравнения – коммерческой вакциной против краснухи  на основе штамма «Wistar RA 27/3». Показано отсутствие различий в физиологических показателях организма обезьян, иммунизированных отечественным и зарубежным вакцинными  штаммами вируса краснухи без адъювантов и в сочетании с ними. Адъюванты не повлияли на показатели безвредности вакцинных препаратов (отсутствие токсичности, реактогенности, аллергенности) в доклинических испытаниях на низших приматах.

__________________________________________________________________________

Ключевые слова: макаки яванские (Масаса fasciсularis), гематология, биохимия, адъювант

Проблема краснухи- «легкого» детского заболевания – имеет высокую социальную значимость, т.к. эта инфекция у беременных женщин приводит к мертворождению или тяжелым поражениям плода – порокам сердца, слепоте, глухоте, умственной отсталости и в итоге к тяжелой инвалидности с детства [10]. Длительное время краснуха в нашей стране оставалась неуправляемой инфекцией в связи с отсутствием отечественных живых вакцин. Введение прививки против краснухи в Национальный календарь профилактических прививок иммунизации (Приказ МЗ РФ № 375 от 27.12.1997 г.) позволяет использовать зарубежные вакцины. Вместе с тем отечественными авторами выделен и  аттенуирован  штамм вируса краснухи «Орлов», который мог бы быть использован  в качестве отечественного вакцинного препарата [6]. В последние годы возросли требования к проведению отдельных этапов разработки новых медикаментозных средств, в частности, к стадии доклинических исследований, одним из важных разделов которых является проведение экспериментов на лабораторных животных [11]. И в этом плане на конечном этапе исследований эксперименты на обезьянах обеспечивают наиболее адекватные результаты, которые с минимальной коррекцией можно экстраполировать и на человека [4,7,5].

Целью настоящего исследования  явилось изучение физиологических параметров обезьян Масаса fuscicularis, иммунизированных препаратом из отечественного вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов», в сравнении с коммерческой вакциной против краснухи на основе штамма «Wistar RA27/3» (производства  Серум Инститьют, Индия)  в опыте на  макаках яванских Macaca fascicularis разного пола.

МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ

Животные. Исследование проводили на 26 половозрелых макаках яванских, разделенных на 2 группы по13 обезьян в каждой. Каждая группа обезьян состояла из 5  самок и 8 самцов, возрастом  4-5 лет, вес в диапазоне  2670 – 5240 г.  Были сформированы 2 группы, состоящие из 3 подгрупп: по 3 обезьяны в контроле и по 10 обезьян в опыте. Вакцину, разведенную в физ. растворе, вводили под кожу правого предплечья в объеме 0,5 мл.

Животных содержали в индивидуальных жилых клетках, оборудованных автоматическим поением, при температуре в вентилируемых  помещениях  18-22 0С.  Животные были адаптированы к условиям содержания и персоналу в течение 1 месяца. Кормили животных  брикетированными кормами, сбалансированными по всем показателям с добавлением  зеленых кормов и фруктов. Ежедневно, кроме брикетов, обезьяны получали яйца, яблоки и гематоген (1/6 часть стандартной пластинки).

Все исследования на обезьянах проводили в строгом соответствии с  требованиями комитета по биоэтике и  федеральным  законом РФ о защите животных от жестокого обращения (ст. 4  Закона РФ о защите животных от жестокого обращения от 01 декабря 1999 г).

Адъюванты. Использованы германий органические соединения ГОС 1 (WDS-14) и ГОС 2 (энигерманий). Концентрация препаратов германия в прививочной дозе –  2 мг/0,5 мл.

Гематологический анализ крови обезьян проводили  на гематологическом анализаторе фирмы «Beckman 5 diff»,USA. В некоторых случаях формулу крови уточняли  при микроскопировании  мазков, окрашенных по Романовскому-Гимза по общепринятой методике [9,3].

Биохимический анализ сывороток крови обезьян проводили на биоанализаторе ВIOCHEM SA (High Technology Inc.,USA) с набором реактивов этой же фирмы [8,2].

Аллергенное действие изучали путем  исследования сыворотки крови обезьян на присутствие антител  класса IgE. Анализ производили с использованием диагностических наборов производства фирмы «Вектор Бест», Новороссийск.  Оптическую плотность измеряли с использованием фильтра 450 нм на автоматическом фотометре  «Униплан» фирмы «ПИКОН», Россия. Измерения проводили не позднее 10-15 мин после остановки реакции. Результаты анализа считали положительными, если значения оптической плотности (ОП) в соответствующей лунке было равно или превышало критическое значение (ОПк), которое вычисляли по формуле: ОПк = ОПср(К-) +0,1,где ОПср(К-)- среднее значение ОП отрицательных сывороток, установленный на предприятии производителя [1]

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Безопасность применения фармакологических и иммунологических препаратов, вводимых людям, наиболее важный  критерий возможности их  использования [11]. Поэтому на первом этапе исследования определяли безвредность адъювантов по следующим  критериям:

–  наличие/отсутствие  местных и общих реакций на введение препаратов в клинических наблюдениях за иммунизированными животными;

– исследованием клинических и биохимических показателей периферической крови подопытных животных;

-наличие/отсутствие аллергенного воздействия, определяемое по уровню IgE .

Клинические наблюдения за иммунизированными животными

Через 24 часа после вакцинации и в течение последующих 30 суток на месте введения никаких реакций (покраснение, отек, расчесы)  не  отмечалось.

Для оценки общих реакций на введение исследуемых препаратов у животных определяли:

– объем и силу движений в конечностях. Для определения этих показателей наблюдали типичные движения обезьян в клетках (прыжки, лазанье, захват предметов) и оценивали их способность сопротивляться извлечению из клетки и насильственному разгибанию и сгибанию конечностей;

– координацию движений (статическая мозжечковая атаксия) оценивали по способности животных сохранять равновесие при перемещении по клетке, по  способности совершать координированные движения конечностями при лазаньи и захватывании предметов;

–  мышечный тонус определяли при пальпировании мышц конечностей в спокойном состоянии и при сгибании-разгибании.

Определяли также наличие тремора, гиперкинезы.

За весь период наблюдения видимых местных и общих реакций на введение препаратов у обезьян отмечено не было.

Определение токсичности  исследуемых препаратов

Возможное токсическое воздействие исследуемых препаратов оценивали по их воздействию на клетки периферической крови, а также по оценке биохимических показателей. Гематологические показатели, полученные до- и после  иммунизации животных и  на контрольной группе обезьян, представлены в таблице 1.

Группы

обезьян

Кол-во

обезьян

в группе

RBC, эритр.

(4-6,5)х1012 /л

Hgb, гемоглобин,

310-350 г/л

Plt, тромбоциты,

(150-500)х109 г/л

WBC, лейкоциты,

(4,5-15)х109 /л

Ne, нейтрофилы

(40-75)%

Ly, лимфоциты

(15-40)%

Контроль

6

6,90 ± 0,19

125,52±3,59

339,26±45,87

12,21±1,19

47,34±3,07

37,55±2,53

«Орлов»+ ГОС-1

6

6,70±0,54

124,8±9,43

213,6±151,39

11,36±5,49

37,72±7,83

53,54±9,50

«Орлов»+ГОС-2

6

6,47±0,59

113,6±11,09

324,2±184,59

11,14±3,14

39,24±21,86

53,52±20,89

«Wistar RA27/3»+ ГОС-1

6

6,25±0,73

119,6±9,09

284,4±115,02

8,96±1,11

37,1±16,41

54,98±15,09

«Wistar RA27/3»+ ГОС-2

6

6,65±0,75

118,4±11,93

342,0±136,09

9,86±1,79

33,08±23,72

61,48±22,93

  Таблица1.Гематологические показатели обезьян, иммунизированных разными штаммами вируса краснухи в сочетании с адъювантами на основе германия

Анализируя  результаты гематологических исследований  обезьян, иммунизированных каждым из вакцинных штаммов, как без адъювантов, так и при их использовании, следует обратить внимание на то, что у    животных всех подгрупп выявляются однотипные изменения. Исходный эритроцитоз у всех животных связан с определенной дегидратацией, вызванной высокой  температурой внешней среды в летнее время  и дефицитом  воды в общей системе поения обезьян. С неспецифическим эритроцитозом  связано и низкое содержание гемоглобина в 1 эритроците (MCH) при нормальном  среднем содержании гемоглобина в общей массе эритроцитов  (MCHC). Эти  колебания состояния кроветворной системы  макаков яванских регистрируются у обезьян всех групп, но, в целом, не  выходят за границы нормативных показателей и не являются следствием иммунизации. Важно отметить, что при исследовании гематограмм и мазков крови, окрашенных по Романовскому-Гимза, не было обнаружено каких-либо  патологических изменений клеток крови, указывающих на токсическое действие исследуемых препаратов, а именно: зернистости эритроцитов, лейкопении, появления незрелых форм лейкоцитов, эозинофилии, изменения формулы крови.

Результаты биохимического  анализа  крови исследуемых животных  представлены в таблице 2. Существенных и закономерных изменений показателей у обезьян всех подгрупп, как до, так и после иммунизации в сравнении с обезьянами в контрольной группе, не выявлено. Незначительное увеличение уровня трансаминаз (АлТ, АсТ) и увеличение показателей щелочной фосфатазы (как у контрольных, так и  у экспериментальных  обезьян) связано с особенностями рациона питания животных и временем забора крови, предшествующим кормлению. Отсутствие значимых изменений в уровне  сывороточных белков крови указывает на сохранность  синтетической функции печени  при применении  ГОС. Нормальный уровень сывороточного креатинина на протяжении всего периода наблюдения подтверждает отсутствие как острой, так и хронической нефротоксичности препаратов и сохранность функции почек.

Показатели липидного обмена, обусловленные половозрастной нормой и характером питания, находятся в пределах референтных значений как в опытных, так и в контрольных группах.

В целом, при исследовании стандартными общепринятыми  гематологическими и биохимическими методами  сывороток крови обезьян опытных и контрольных групп токсического воздействия исследуемых препаратов не обнаружено.

Таблица 2.Биохимические показатели макаков яванских, иммунизированных штаммами вируса краснухи

Группы

обезьян

АлАТ

N-0-40Е/л

АсАТ

N-4-40 Е/л

Щелочная фосфатаза

N-53-128 Е/л

Мочевина N-2,5-6,43 ммоль/л

Креатинин

N-35-125 мкмоль/л

Билирубин N-3,4-17,1 мкмоль/л

Глюкоза N-3,6-6,1 ммоль/л

Холестерин

N-0-5,16 ммоль/л

Триглицериды

N-4,1-18,6 ммоль/л

Белок общий

N-62-85 г/л

Альбумин

N-35-53 г/л

Контроль

34,86±7,09

46,36±4,92

454,32±21,66

4,49±0,47

101±14,04

2,86±0,47

4,96±0,73

4,40±0,40

0,68±0,22

75,53±3,0

52,25±3,10

«Орлов»+

ГОС-1

34,04±12,35

47,40±7,47

661,12±359,15

3,27±1,12

93,7±10,41

1,86±0,35

4,21±0,62

4,39±1,59

0,47±0,18

77,20±5,3

48,61±3,33

«Орлов»+

ГОС-2

48,14±34,6

42,14±7,82

589,4±268,86

3,48±0,66

105,63±19,7

1,51±0,26

4,21±1,05

4,35±0,95

0,61±0,32

78,67±7,0

48,03±2,19

«RA27/3» +

ГОС-1

37,97±15,04

43,25±8,02

575,38±326,73

4,69±1,21

99,98±14,47

1,46±0,75

5,34±1,03

5,51±2,67

0,63±0,33

74,74±2,8

49,21±3,12

«RA27/3» +

ГОС-2

40,43±17,41

52,73±15,63

496,9±135,95

4,68±3,47

93,07±16,39

2,63±1,03

4,40±3,87

5,38±1,23

0,62±0,11

78,07±5,5

52,65±3,31

В динамике определяли концентрацию Ig E в сыворотке крови обезьян (таблица 3).

Таблица 3. Концентрация IgE в сыворотке крови экспериментальных обезьян в динамике.

Штамм «Орлов»     Контроль

Штамм  «WistarRA27/3» Контроль

№№

обезьян

Концентрация IgE ,

N-0<25МЕ/мл

№№ обезьян

Концентрация IgE

N-0<25МЕ/мл

Исходно

ч/24 ч.

ч/7 дней

И сходно

ч/24 ч

ч/7 дней

1.

12

8

2

1.

6

5

1

2.

15

10

6

2.

5

5

4

3.

7

11

1

3.

13

5

1

«Орлов» + ГОС-1

«Wistar RA27/3» + ГОС-1

Исходно

ч/24 ч.

ч/7 дней

Исходно

ч/24 ч.

ч/7 дней

1.

3

1

1

1.

11

7

1

2.

25

11

12

2.

1

4

5

3.

4

4

2

3.

2

4

2

4.

20

8

15

4.

5

3

1

5.

2

13

8

5.

6

6

4

«Орлов» +ГОС-2

«Wistar RA27/3» + ГОС-2

Исходно

ч/24 ч.

ч/7 дней

Исходно

ч/24 ч.

ч/7 дней

1.

5

5

5

1.

4

5

1

2.

10

8

2

2.

3

2

1

3.

1

2

12

3.

35

30

10

4.

10

14

10

4.

7

5

7

5

1

10

4

5.

10

12

7

Как следует из таблицы 3,иммунизация обезьян  препаратом из вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов» в сравнении с коммерческой живой аттенуированной краснушной вакциной из штамма  «Wistar RA27/3»  в сочетании с адъювантами на основе германия не вызывает уживотных  повышения концентрации IgE и находится у всех животных на уровне референтных значений.

Ранее, в опыте на обезьянах макака резус, была установлена специфическая безопасность вакцинного штамма «Орлов»  [4,6].

Проведенное исследование показало, что использование германий органических соединений в качестве адъювантов при иммунизации обезьян Масаса fascicularis против краснухи не оказывает негативного воздействия на вакцинные препараты по критерию безопасности их применения: реактогенности, аллергенности, токсичности.

Литература:

1.    Долгов В.В., Ракова Н.Г., Колупаев ВЕ., Рытикова Н.С. Иммуноферментный анализ. Москва, 2007, стр. 209-232.
2.    Долгов М., Морозова В., Марцишевская Р.  и др. Клинико-диагностическое значение лабораторных показателей. –Москва .: Центр.-1995.-С.209.
3.    Куксова М.И. Кроветворная система обезьян в норме и патологии. М. «Медицина», 1972, 128С.
4.    Лаврентьева И.Н., Жебрун А.Б., Агрба В.З., Яковлева Л.А. Обезьяны макака резус как модель для доклинического изучения вакцинных штаммов вируса Краснухи//Материалы Всероссийской научной конференции «Перспективные направления использования лабораторных приматов в медико-биологических исследованиях. Сочи-Адлер, 2006, с.38-43.
5.    Лаврентьева И.Н., Сухобаевская Л.П., Агрба В.З. и др. Доклиническое изучение штамма «Орлов-В» на обезьянах как ключевой этап оценки пригодности аттенуированного вируса для получения живой вакцины против краснухи. В кн. «Фундаментальные и прикладные аспекты медицинской приматологии» , Сочи-Адлер, 2011, стр.206-212.
6.    Лаврентьева И.Н., Сухобаевская Л.П.,  Агрба В.З., Яковлева Л.А., Радюкевич Ю.А., Жебрун А.Б. Штаммы вируса Краснухи для живой аттенуированной вакцины//Эпидемиология и вакцинопрофилактика, 2003,№4, с.7-10
7.    Лапин Б.А., Джикидзе Э.К., Фридман Э.П. Руководство по медицинской приматологии. М., 1987
8.    Медведев В.В., Волчек Ю.З. Клиническая лабораторная диагностика./Из-во «Гиппократ», С-Петербург,1995,205с.
9.    Руководство по клиническим лабораторным исследованиям (основанное В.Е.Предтеченским). Под редакцией Л.Г.Смирновой и Е.А.Кост. Медгиз. Москва, 1960, стр. 7-40
10.    Семериков В.В., Лаврентьева И.Н., Таточенко В.К., Нисевич Л.Л., Фельдблюм И.В. Краснуха//Пермь-Санкт-Петербург-Москва, 2002, 174с.
11.    Хабриев Р.У. Руководство по экспериментальному доклиническому изучению новых фармакологических веществ. Москва, 2005, 774С.

Адрес для корреспонденции:

Карал-оглы Джина Джинаровна-Karal-ogly Djina Djinarovna 

Адрес: 354376,Сочи-А,Веселое-1, ФГБУ «НИИ МП» РАМН

Тел: сот.8(928) 449 34 38

E-mail: karal@primatologia.ru 

Лаврентьева Ирина Николаевна-Lavrentyeva Irina Nikolaevna 

Амбросов Игорь Валерьевич –Ambrosov Igor Valerievich 

Матело С.К. – Matelo Cvetlana Konstantinovna 

Агрба Виолета Засимовна-Agrba Violeta Zasimovna 

Чугуев Юрий Петрович-Chuguev Uriy Petrovich 

Гварамия Ирина Алексеевна-Gvaramiya Irina Alekseevna 

Гвоздик Татьяна Евгеньевна-Gvozdik Tatiana Evgenievna 

Мухаметзянова Евгения Ильдаровна-Mukhametzyanova Evgeniya Il’darovna 

Источник


Тактика работы врача с приматами
Гусельников Е.В. Ассоциация врачей ветеринарной медицины БНПЦ “ЧИН” тел. 927-55-92

Ветеринарные врачи, работающие с экзотическими животными, в частности с обезьянами, могут столкнуться с проблемами, как организации терапевти-ческого процесса, так и личной безопасности по целому комплексу антропозо-онозов и зооантропонозов. У обезьян выделяют более 80 возбудителей инфек-ционных заболеваний из разных система-тических групп [4].

К антропозоонозам относятся: туберкулез, лепра (проказа), гепатиты А и В, корь, краснуху, натуральную оспу, полиомиелит, энтеровирусные инфекции, вирусный конъюнктивит, амебиоз, балан-тидиоз, трихоцефалез, микроспорию, трихофитию и другие заболевания [1].

К зооантропонозам относятся: сальмо-неллезы, лептоспироз, возвратный тиф, бешенство, псевдотуберкулез, туляремия, кампилобактериоз, листериоз, токсоплаз-моз, энцефаломиокардит, вирусные гепа-титы, оспа обезьян и др.(1). При строгом соблюдении правил отлова, транспорти-ровки и карантинирования диких обезьян практически исключается импорт инфек-ции из эпидемических очагов. Тем не менее, врач должен учитывать, что в при-роде некоторые виды обезьян являются естественными резервуарами и единст-венными источниками инфекций таких заболеваний как герпес вирус В, желтая лихорадка, лихорадка Эбола, марбурская гемморрагическая болезнь, венесуэльский энцефаломиелит, вирусные инфекции Яба и Тана и многих других болезней; кроме того – источниками возбудителей онко-генных ДНК-иРНК-содержащих вирусов (лимфотропные вирусы) (4).

Эволюционное родство и биологи-ческое сходство человека и других прима-тов, особенно высших обезьян, уникальны: по данным гибридизации ядерной ДНК, сходство человека с шимпанзе дос-тигает 90-98%, низших обезьян с челове-ком – 50-75%, аминокислотная последова-тельность и иммунологическое сходство изученных белков человека и шимпанзе превышает 99%(3). Но, оставаясь биоло-гически более близкими человеку, чем все другие ныне живущие млекопитающие, обезьяны обнаруживают существенные отличия физиологических показателей от таковых у человека. Особенностью обезь-ян является их необычная эмоциональ-ность, высокая степень ориентировочно-исследовательских рефлексов. Это в зна-чительной мере отражается на показате-лях ряда физиологических функций. На-пример, частота сердечных сокращений в состоянии покоя у них равна 80-100 уда-рам в минуту [2], а во время стрессовой ситуации увеличивается до 160-300 уда-ров в минуту. Температура тела низших обезьян зависит от времени суток, мы-шечной активности, эмоционального состояния и даже от температуры окру-жающей среды. Так, например, у шимпан-зе она составляет 37,2-37,5 С0, у низших обезьян 38-39 С0, суточные колебания достигают иногда 3 С0 [3]. Днем темпера-тура тела выше, чем ночью. При интен-сивной мышечной работе, при эмоциях она может достигать 41С0. Если в повсе-дневной жизни рН желудочного сока 1,0-2,2, то в стрессовой ситуации он может защелачиваться до 5,0-7,0. Многие физио-логические показатели могут колебаться при проведении таких процедур, как взя-тие крови, измерение температуры тела и т.д.

Примером ситуации, позволяющей оценить особенности и сложности работы ветеринарного специалиста в организации лечебного процесса, может служить исто-рия болезни обезьяны по кличке Мити.

Митя (макак, самец в возрасте 4 лет) наблюдается мною 3,5 года. За этот период проводились в основном профилактические мероприятия, если же животное заболевало, то ограничивались симптоматическим лечением в условиях содержания (достаточно просторная клетка в офисе фирмы “Плачек и Золотая рыб-ка”). Но в данном случае возникла необходимость госпитализации животного в клинику биологического научно-практического центра “ЧИН”.

Обезьяна поступила на лечение с анамнезом и симптомами отравления. Первоначально необходимо было исключить инфекционные заболевания, так как для обезьян любой патологический фак-тор, влияющий на снижение иммунного статуса организма, может определить последующую инфекционную патологию. Учитывался так же, как было сказано выше, и стресс-фактор, например: осмотр врачом, нахождение в маленькой клетке. В тоже время, когда Митю забирали на выходные за город, он чувствовал себя прекрасно, но стоило его оставлять одного в помещении как он впадал в депрессию, и физиологические показатели его были ниже нормы.

При первичном осмотре было от-мечено угнетение, вялость, отказ от пищи, учащенное дыхание, систолическая аритмия, небольшая ригидность массетеров, слабый рефлекс зрачка, болезненность в области правого подреберья, сухость и бледность слизистых, судорожная готов-ность, вызванная гипоксией.

В связи с вышеперечисленными причинами вместе с коллегами по работе, принимавшими участие в лечении и диагностике (Соколова О., Бурцева М., Валее-ва С., Корнеева Т., Ситникова О., Косило-ва Н., Дроздов В. и др) мы пришли к вы-воду о необходимости проведения сле-дующих клинико-диагностических иссле-дований:

  • клинический анализ крови;
  • АЛТ, АСТ, креатинин, амилаза;
  • серологические исследования на лептоспироз, токсоплазмоз, хламидиоз;
  • общий анализ мочи и кала.

При первичном диагностировании анализы показали наличие в организме антител к Leptospira Icterohaemorrhagiae (титр 1:50), который вырос через неделю до 1:400, при дальнейших исследованиях было зарегистрировано снижение титра до 1:50, еще через две недели после курса лечения – результат был отрицательным. При исследовании на токсоплазмоз – титр составил 1:10 (повторно через пять дней -отрицательно). Дальнейшие исследования показали наличие в моче трихомонад, а в кале – эхиностому. Уровень гемоглобина в крови составлял 82 г/л, далее держался на уровне 86 г/л, хотя и опускался в период болезни до 63 г/л. Количество эритроци-тов колебалось от 4,0 до 2,7х1012, лейко-цитов – 3,9х109, далее увеличилось до 8,9х109. Количество креатинина составля-ло 111,5мкмоль/л, амилазы – 11,8мг/с. на л. АЛТ – 2,0 мкмоль и АСТ – 2,3 мкмоль, далее снизились до нормы (0,4 и 0,8 мкмоль соответственно).

Для организации терапевтического процесса необходимо было одновременно решать следующие задачи:

  • специфическое противомик-робное и антитоксическое лечение;
  • адекватное парентеральное питание;
  • коррекция метаболических сдви-гов, выведение токсинов с применением энтеросорбентов;
  • коррекция дегидратации;
  • улучшение и поддержание работы сердца, нормализация микроциркуляции в органах и тканях;
  • профилактика и лечение почечной и печеночной недостаточности;
  • нормализация реологических свойств крови;
  • поддержание иммунологиче-ского статуса;

Нарастающее обезвоживание и от-каз от еды заставило нас в первую очередь обеспечить обезьяну полноценным парен-теральным питанием, которое включает в себя насыщение организма энергией, водой, электролитами, витаминами, мик-роэлементами. Мы учитывали, что на каждые 100 мл вводимой жидкости необ-ходимо 100 ккал энергии, 2,0 ммоль калия и 2,5 ммоль натрия(5). Назначили сле-дующие препараты: глюкоза 10% с инсу-лином (1ед./4г), т.к. основным источни-ком энергии являются углеводы, на их долю приходится до 50% всего энерго-обеспечения, или 2 – 5 г/кг массы в сутки (энергетическая ценность углеводов – 1 г дает 4 ккал). Для синтеза специфических органных белков в парентеральное пита-ние включили экзогенный расщепленный белок в виде аминостерила. Суточная дозировка по аминокислотам составила 0,5 – 1,0 г/кг массы. Средняя скорость внутривенного введения аминостерила – 1,5 мл/кг в час (для метаболизма 1г азота необходимо 120 – 200 ккал энергии). Для восполнения потребности в воде и элек-тролитах на начальных этапах был назна-чен раствор Рингера-Локка с панангином (1ммоль К+/кг), физиологический раствор, а далее дисоль. По симптоматическим показаниям применялись: из бензодиазе-пиновой группы – диазепам (реланиум), как седативное и противосудорожное; для положительного влияния на обменные процессы и кровообращения мозга ноо-тропное средство – пирацетам; эссенциале – нормализация метаболизма липидов, белков, детоксикационная функция; при-менялись также рибоксин, анальгетики, преднизолон. Внутрь сорбенты – энтерокат, альфогель. Подкожно – сульфокамфо-каин, витамидин. Проведен недельный курс цефалоспаринов в терапевтических дозах.

В дальнейшем, после курса лечения, состояние его улучшилось: животное стало более активное, появился аппетит, рефлекс зрачка восстановился, уменьши-лась ригидность массетеров. К уже назна-ченным препаратам были добавлены мет-ронидозол, карсил, раствор 10% глюкозы заменен на 5%. Был проведен курс магни-тотерапии, сульфодиметоксина, циклофе-рона. Впоследствии (через 3 недели) обезьяна прошла период реабилитации. Митя получал биоцифит, стрептобифид, препараты содержащие железо, гомеопа-тические препараты (арника, камфорору-биний и др.), что сказалось на стабилиза-ции его состояния.

Животное стало проявлять свой нрав уже на 3 – 4 день лечения, как только состояние стало улучшаться. Возникла необходимость в четких действиях лечащего персонала, т.к. нельзя было забывать, что имеешь дело не с простым комнатным животным. Макак в качестве пациента может быть весьма агрессивен, что требует постоянного повышенного внимания. В нашем случае все процедуры с Митей проводились исключительно на руках у владельцев, которые были предупреждены о возможных последствиях.

Работа с этими непредсказуемыми животными очень интересна, но нельзя забывать что, контакт с приматами всегда сопряжен с определенной опасностью для здоровья человека и требует строгого соблюдения правил как общей, так и личной техники безопасности при общении и лечении этих созданий.

Литература:

  1. Б.А.Лапин, Э.К.Джикидзе, Э.П.Фридман.”Болезни обезьян, опасные для человека” /Руководство по медицинской примато-логии//М. Медицина1987, с 119-121.
  2. М.И.Куксова. Кроветворная система обезьян в норме и патологии//М. Медицина, 1972, с128.
  3. Л.А.Фирсов. И.П.Павлов и Экспериментальная приматология. Ленинград, Наука,1982,с155.
  4. Fiennes R.N.T.-W. Zoonoses of primates: The epidemiology and ecology of simian diseases in relation to man./London.Weidenfeld a.Nicolson,1967,p 190-193.
  5. Ю.А.Аверьянов, Э.И.Романов, А.Д.Сафонова. “Острый перитонит. Хирургическая тактика и интенсивная терапия”. Нижний Новгород. 1994.

Источник