Нормы крови для шиншиллы
КЛИНИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ КРОВИ ШИНШИЛЛ
Общий анализ крови помогает выявить:
Забор крови осуществляется двумя способами: из пальца (каппилярная) и из вены (венозная)
У шиншилл, как правило, берется на исследование каппилярная кровь путем среза ногтевой пластины на пальчике.
Показатели крови здоровой шиншиллы
(расшифровка анализа)
| Показатели | Норма |
| Эритроциты | 6-8 х 1000000/ мм3 |
| Гемоглобин | 8-15 г/дл |
| Гематокрит | 27-54% (в среднем 38) |
| Лейкоциты | 6-15 х 103 / мм3 |
| Нейтрофилы | 40-55% (в среднем 43) |
| Эозинофилы | 0-7% (0-9) |
| Базофилы | 0,6% (0-11) |
| Лимфоциты | 45-60% (в среднем 54) |
| Моноциты | 1% (0-6) |
| Тромбоциты | 450-740 х 103/ мм3 (в среднем 274) |
Показатели клинического анализа крови шиншиллы (расшифровка анализа).
Уровень эритроцитов (RBC красные кровяные тельца) – измеряется x10 в 12 степени клеток/литр или млн в 1 кубическом мм.
В анализе крови — красные кровяные клетки, которые участвуют в транспорте кислорода в ткани и поддерживают в организме процессы биологического окисления.
самые многочисленные из форменных элементов. Зрелые эритроциты не содержат ядра и имеют форму двояковогнутых дисков.
Циркулируют 120 дней и разрушаются в печени и селезенке. В эритроцитах содержится содержащий железо белок — гемоглобин, который обеспечивает главную функцию эритроцитов — транспорт газов, в первую очередь — кислорода.
Повышено:
Понижено:
Гемоглобин (HGB,Hb) пигмент красного цвета, содержит железо, обогащает организм шиншиллы кислородом. Измеряется в молях или граммах на литр или децилитр (1дл = 0.1л)
Повышено:
Понижено:
Гематокрит (Ht, HCT) отображается в процентах к общему объему крови (тогда он обозначается в %), или в литрах на литр (л/л) – тогда он обозначается десятичной дробью (с точностью до сотых) и показывает соотношение объема эритроцитов (как правило) к объему плазмы крови.
Кровь состоит на 45% из форменных элементов (эритроциты, которых в крови больше всего, тромбоциты и лейкоциты) и 55% плазмы.
Повышено:
Понижено:
Лейкоциты (WBC белые кровяные тельца) – клетки крови, основная функция которых – защита и обезвреживание организма от чужеродных, внутренних и внеших патогенных частиц (таких как вирусы, бактерии, микроорганизмы, опухолевые и отмершие клетки организма).
Повышено:
Понижено:
Лейкоцитарная формула:
Нейтрофилы являются очистителя организма от токсинов, вирусов и бактерий, а также продуктов их жизнедеятельности. Проводят детоксикацию организма.
Повышено:
Понижено:
Эозинофилы очищают организм от токсинов при аллергии и воспалениях.
Повышено:
Понижено:
Базофилы выделают гистамин и гепарин при аллергических реакциях и воспалениях.
Повышено:
Понижено:
Лимфоциты вырабатывают антитела к различным чужеродным веществам и токсинам в организме.
Имеют пролонгированное действие.
Повышено:
Понижено:
Моноциты (фагоциты) уничтожают инородные частицы в организме, возбудителей заболеваний.
Повышено:
Понижено:
Тромбоциты отвечают за скорость свертывания крови в организме шиншиллы.
Повышено:
Понижено:
Полное или частичное копирование и размещение информации с сайта запрещено.
Andrea Wuck, Jutta Hein, Katrin Hartmann
Medizinische Kleintierklinik
LMU Ludwig-Maximilians-Universitat
Munchen Deutschland
Перевод на русский язык : Денис Михайлов
Введение
Шиншиллы, ранее разводимые для производства меха, в последние годы становятся все более важными как домашние животные и как пациенты в ветеринарной практике. Владельцы часто опасаются больших затрат, когда дело касается ухода за животными. Поэтому деференсные диапазоны становятся все более важными в контексте диагностики.
Однако референсные диапазоны, доступные в литературе, часто относятся только к нескольким параметрам или получены только от небольшого количества шиншилл, Содержание, пол и возраст обычно не учитываются, а методы взятия проб крови в ветеринарной практике не применимы перед владельцами.
Для шиншилл описаны многочисленные методы и места пункции для взятия проб крови.
Метод отрезания когтя сегодня устарел. Пункция сердца или Vena (V.) jugularis широко распространена при лабораторном содержании животных для получения большего количества крови, но не может быть выполнена без седации или при владельце в кабинете.
В ветеринарной практике наиболее применима пункция V. saphena lateraIis. Кроме того, используемые аналитические методы обычно не соответствуют лабораторным методам, используемым сегодня в Германии, поэтому полученные значения не могут быть перенесены в практическую плоскость.
Цепью этого исследования было создание лабораторных диагностических референсных диапазонов для как можно большего количества параметров крови (43) у клинически здоровых шиншилл различного внешнего вида, возраста и пола в практических условиях с использованием методов лабораторного анализа общепринятых в Германии и сравнение их с данными, приведёнными в литературе.
Материалы и методы
У 156 клинически здоровых шиншилл в возрасте от 8 недель до 23 лет (9% (14/156) 6 месяцев, 91 % (142/156)> 6 месяцев), была взята кровь из V. saphena lateralis. Шиншилл можно было отнести к девяти различным окрасам шерсти (стандартный, черный бархат, афрофиолет, бежевый, эбони, белый, серебро, шоколад, мозаика). Из общего числа шиншилл 27,6% (43/156) были некастрированными самцами, 12,2% (19/156) кастрированными самцами, 59,6% (93/156) некастрированными самками и 0,696 (1/156) кастрированными самками.
Были изучены гематологические параметры – гематокрит (Hkt), гемоглобин, количество эритроцитов, индексы эритроцитов (MCV, МСН, МСНС), количество лейкоцитов, количество тромбоцитов (Cell-Dyn® 3500 R, Ра. АВВОТТ Diagnostics, Illinous, USA) и гемограмма (относительные и абсолютные значения) (световой микроскоп BH2OkuIar®, Oympus, Japan), активность ферментов – аланинаминотрансферазы (АИ Т), щелочной фосфатазы (АР), аспартаминотрансферазы (AST), глутаматдегидрогеназы (GLDH), у- глутамилтрансферазы (y-GT), лактатдегидрогеназы (LDH), креатинкиназы (СК), α-амилазы, липазы и холинэстеразы (СНЕ), концентрации в сыворотке субстратов – глюкозы, фруктозамина, общего белка, альбумина, холестерина, триглицеридов, желчных кислот в сыворотке (SGS), билирубина, мочевины и креатинина, а также электролитов – кальция, фосфатов, магния, натрия, калия, хлоридов и железа (Autoanalyser Hitachi 911® , Fa. Boehringer Mannheim, Mannheim, Deutschland). (табл. 1).
Результаты
В таблице 1 приведены 95% – процентные диапазоны всех параметров для изученных шиншилл.
Обсуждения
Для взятия проб крови у шиншилл в практических условиях подходит прежде всего V. saphena Iateralis. Во время сбора образцов прямо на гепаринизированную канюлю (®0‚9 мм), как и для морской свинки, помешают пробирку для образцов Microvette® 600 (Sarstedt Nflmbrecht, Germany). Это связано с медленным течением крови.
Вопреки частому предположению, что лабораторные значения шиншилл соответствуют лабораторным значениям морских свинок или кроликов, ни с кроликами,ни с родственными морскими свинками явных совпадений нет, хотя можно установить некоторые параллели.
По сравнению с морскими свинками, ближайшими родственниками шиншилл, и кроликами, очевидны следующие расхождения:
-Шиншиллы также имеют лимфоцитарную картину крови, но количество лимфоцитов (абсолютное и процентное) у них еще более высокое (до 94% от общего количества лейкоцитов).
-Шиншиллы демонстрируют несколько более низкую (33-48%) гемоконцентрацию (Hkt) чем морские свинки (39 -55%) и кролики (36 – 55%).
-Концентрация субстратов – глюкозы и фруктозамина у шиншилл ниже, чем у морских свинок и кроликов.
-Концентрация билирубина у шиншилл (до 7,95 мкмоль/л) значительно выше. чем у морских свинок (до 1,59 мкмоль/л) и кроликов (до 2,53 мкмоль/л).
-Активность ферментов – липазы, y-GT, LDH и особенно AST (шиншиллпа до 153 МЕ/л; морская свинка до 90 МЕ/л) выше у шиншилл, а показатели GLDH и AP значительно ниже. Нельзя сказать, действительно ли это увеличение / снижение активности или же различная чувствительность тестовых систем к образцам крови разных видов.
Отклонения лабораторных результатов от данных в литературе в большинстве случаев сводятся к использованию различных систем тестирования.
Заключение
В данном исследовании были установлены лабораторные диагностические референсные диапазоны 43 гематологических параметров для клинически здоровых шиншилл различного внешнего вида, возраста и пола в практических условиях (забор крови производился без седации из V. saphena Iateralis с использованием общеупотребительных в Германии методов), а также выполнено сравнение шиншилл с другими травоядными животными (морские свинки, кролики) по данным литературных источников. Полученные референсные значения во многих случаях в значительной степени согласуются с имеющимися в литературе данными.
Отклонения в большинстве случаев вызваны использованием различных методов проведения анализа.
Источники
MERRY С. An lntroduction to Chinchilas. Vet Tech 1990; 11; 5: 321.
FOX J, COHEN B, LOEW F. Biology and Diseases of Other Rodents. Lab Anim 1984; 308: 192.
ElDMANN S. Untersuchungen zur Atiologie und Pathogenese von FelIschaden beim Chinchilla. Diss Vet Med, Hannover 1992; 33-5.
SPANNL М, KRAFT Н. Blutwerte beim Chinchilla. Berl Munch TierarztI Wschr 1988; 101 : 344-7.
НЕIN J, HARTMANN К. Blutentnahme und labordiagnostische Referenzbereiche beim Kaninchen. TierarztI Prax 2003; 31 (k): 321-8.
НЕIN J, HARTMANN К. Blutentnahme und labordiagnostische Referenzbereiche beim Meerschweinchen. Tierarztl Prax 2003; 31 383-9.
JAKUBOW К, GROMADZKA-OSTROWSKA J, ZALEWSkA В. Seasonal changes in the haematoIogicaI indices in peripheral blood of chinchilla (Chinchilla laniger L.). Сотр Biochem Physiol 1984; 78 (4):845-53.
Лабораторные показатели крови должны трактоваться только в сочетании с общим обследованием и изменением клинического состояния. Кровь у грызунов отбирать очень тяжело, для них это громадный стресс, поэтому не желательно подвергать дегу болезненным процедурам просто так ради «профилактики».
Цитирую выдержки из авторитетных научных трудов.
Авторы:
Джоди Ньюджент-Deal , PVT, VTS (анестезия) Калифорнийского университета
DVM, Дэвис ветеринарной медицинской клинической больнице и Christal Поллок , DVM,
Lafeber «Компания ветеринарный консультант»
Рецензент: Lorelei Тиббетсом , LVT, Центр по борьбе с болезнями птиц и экзотических животных. Отдел ветеринарной медицины, Нью-Йорк, 20 августа 2010
Национальный центр исследований мелких животных. Забор крови микросайт.
https://www.nc3rs.org.uk/bloodsamplingmi … asp?id=313
. Accessed December 31, 2009. Сведения от 31 декабря 2009 года.
Duke University Medical Center Animal Care & Use Program.Duke University Medical Center уходу за животными и использовании программы. Кровь методы сбора.
https://vetmed.duhs.duke.edu/guidelines_ … TECHNIQUES
.
https://vetmed.duhs.duke.edu/guidelines_ … odents.htm
# BLOOD_WITHDRAWAL_TECHNIQUES . Accessed January 5, 2010. По состоянию на 5 января 2010 года.
Дайер С.М., Cervasio EL. Обзор способов и методы сбора крови в практике у экзотических домашних животных. Vet Clin North Am Exotic Anim 11(3):423–443, 2008. Ветеринар клиника Северной Am Экзотический Anim 11 (3) :423-443, 2008 года.
Florida Atlantic University Veterinary Services.Florida Atlantic University ветеринарной службы. Общие методы сбора крови и инъекции у лабораторных животных. URL:
https://www.fau.edu/research/ovs/adminis … ection.php
URL:
https://www.fau.edu/research/ovs/adminis … ection.php
По состоянию на 5 января 2010 года.
Фаулер ME. Способы содержания и обращение с дикими и домашними животными. (ed 3). (ED 3). Ames, IA: Wiley-Blackwell; 2008. Эймс, Айова: Wiley-Blackwell, 2008.
Подол, AJ Смит, П. Сольберг подкожный прокол вены для забора крови из мыши, крысы, хомяки, песчанки, морские свинки, хорька и норки. Lab Anim 32(4):364-368, 1998. Лаборатория Anim 32 (4) :364-368, 1998 года.
Джослин Джо. Методы сбора крови у экзотических мелких млекопитающих. J Med экзотических животных 18 (2) :117-139, 2009 года.
Marini RP, Jackson LR, Esteves MI, et al.Marini RP, Джексон LR, Эстевес М.И. и др.Влияние на гематологические изофлурана переменных в хорьков. Am J Vet Res 55 (10) :1479-1483, 1994 года.
McClure DE.МакКлюр DE. Клиническая патология и отбора образцов у лабораторных грызунов. Ветеринар клиника Северной Am Экзотический Anim Pract 2 (3) :565-590, 1999 года.
Mitchell MA, Tully TN (eds).Митчелл М.А., Талли TN (ЭЦП). Руководство по практике экзотических домашних животных. Сент-Луис: Saunders; 2009.
Morris JL, Bevan RD.Моррис JL, Беван RD.. Развитие сосудистого русла в ухе кролика: сканирующая электронная микроскопия сосудистых слепки коррозии. Am J Anat. Am J Анат. 171(1):75-89, 1984.
Мюррей МДж. Кролик и хорёк. Отбор проб и артефакты: размышления и соображения. . Лабораторная медицина Птицы и экзоты домашних животных. Филадельфия, Пенсильвания: Сондерс, 2000: 265-268.
О’Мэлли Б. Обзор клинической анатомии и физиологии экзотических видов: Структура и функции млекопитающих, птиц, рептилий и амфибий. New York: Elsevier Saunders, 2005.
Quesenberry К.Е., Карпентер JW. Хорьки, кролики и грызуны: основы клинической медицины и хирургии, 2-е изд. Сент-Луис: Saunders Elsevier; 2006.
Методы фиксации и осмотра животных.
Первое, на что требуется обратить внимание, это общий внешний вид животного и его поведение. На болезненное состояние шиншилл и дегу может указывать потеря веса, сгорбленная осанка, нарушения походки, потрепанный мех, затрудненное дыхание и другие факторы. Животные могут быть вялыми или не отвечает на стимуляцию. Шиншиллы и дегу должны осматриваться спокойно и осторожно, чтобы минимизировать стресс. Ручных, небеременных животных можно просто вытащить из клетки, потянув за основание хвоста (прямо так и написано!!!), за загривок или обхватив поперёк тела, при этом другой рукой необходимо поддерживать животное под грудь или под живот. Лучше, если животное для осмотра предоставит хозяин. Временное ограничение подвижности может быть достигнуто путем заворачивания в полотенце вокруг тела. Дегу может быть осторожно завёрнут в полотенце или пелёнку, заботясь, чтобы не затруднить дыхание. Беременные самки не должны тревожиться без необходимости. Беременность можно обнаружить при пальпации, или она может быть определена путем регулярного взвешивания.
Забор крови.
Ключевые моменты
• Забор крови у мелких млекопитающих может быть затруднен.
• Тщательно взвесьте преимущества получить образец крови по сравнению с риском стресса от процедуры сбора.
• Предельные забора крови не более 0,5-1,0% от массы тела.
• Стремсс от перевозки и стресс от самой процедуры может влиять на результаты анализа крови.
• Если животное не является очень обессиленным или очень спокойным, обязательно нужно использовать анестезию или седацию, чтобы минимизировать стресс от процедуры, но помните, что анестезия может также повлиять на результаты испытаний.
• Небольшие образцы крови могут быть собраны с боковой подкожной вены практически у всех мелких млекопитающих.
• Малое количество крови можно отбирать из хвостовой вены.
• Яремную вену и бедренную вену рекомендуется использовать для отбора больших количеств крови.
Введение
Биохимию гематологических и сывороточных показателей считают частью минимальной базы данных, но сбор образцов крови у мелких млекопитающих может быть очень сложным. Чтобы стать специалистами по мелким декоративным животным, сначала необходимо понять анатомическое расположение сосудов и связанные с ними особенности, а затем практика, практика, практика. Ветеринарные специалисты в области ветеринарной медицины мелких животных также должны быть осведомлены о потенциальных рисках, связанных с забором крови у этих мелких видов. Есть целый ряд опубликованных статей, в которых приведены нормальные клинические значения в крови здоровых и больных домашних животных(собак кошек, лошадей и др), однако лабораторные результаты могут быть искажены различными факторами, включая анестезию, пол, возраст, стадию цикла репродуктивной функции, циркадный ритм, (здесь я в шоке, они даже циркадные ритмы отслеживают!!!) диету, сезон, содержание, и стресс. Тип антикоагулянта и способ венепункции также может влиять на результаты анализа крови. К сожалению, опубликованные нормальные и патологические значения в крови не дают никакой информации об этих параметрах у экзотических видов. Внутренние референтные (нормальные, то есть свойственные здоровому животному) значения могут быть разработаны, если у вас имеется достаточно большое количество здоровых животных и есть возможность следить за вариабельностью показателей в разных группах здоровых животных, однако это требует последовательной методологии при сборе образцов крови, включая тип использованного анестетика и антикоагулянта.
1. значение температуры тела для содействия vasoodilation (тонуса вен). Достигается путем размещения клетки с грызуном на грелку, установленную на малую степень нагревания (видимо имеется в виду электрогрелка) или размещение клетке в инкубаторе при температуре 39 ° C (102 ° F) в течение 5 до 10 минут. Мониторинг пациента проводят внимательно, потому что перегрев может привести к обезвоживанию и гипертермии. Для хорошего просматривания вены на хвосте грызуна необходимо поместить хвост в теплую воду (35-40 ° С или 95-104 ° F) в течение 5 до 10 секунд или завернуть хвост в тёплую салфетку. Избегайте применять эту технику у шиншиллы (шиншилла lanigera), поскольку они перегреваются очень легко. (от себя добавлю, что дегу не только легко перегреваются, но при грубом воздействии на хвост, он очень легко травмируется)
2. За исключением хорька (Mustela Putorius фуро), остальные экзотические домашние животные лучше обездвижить. Для седации применяют или изофлурана или севофлуран (газовые наркотические препараты для общей анестезии), чтобы минимизировать стресс от процедуры . Неопытные ветеринары также выиграют от анестезии пациента. Многие из мест рекомендуемых венопункций у небольших грызуны, таких как крысы и мыши были разработаны в ходе проведения опытов, где у многих животных берут кровь друг за другим. Однако специалистов с такой профессиональной подготовкой мало, поэтому даже рядовые сотрудники могут стать специалистами в трудной процедуры венепункции, если будут проводить разумную анестезией. Но анестезия также может влиять на показатели гематологии. Например, у хорьков под наркозом изофлураном происходит быстрое снижение гематокрита, гемоглобина и красных кровяных клеток, и эти значения не восстановятся даже в течение 45 минут.
3. Если общая анестезия не используется, рекомендуем обездвижить домашнее животное мидазоламом (0,25-1,0 мг / кг внутримышечно). (снотворные и седативный препарат для премедикации и общего наркоза в гуманитарной медицине)
4. Возможно применение местных анестетиков, такие как EMLA ® крема (AstraZeneca LP, Уилмингтон, Делавэр), которым необходимо обработать вену за 30 минут до венепункции (препарат для местной анестезии или попросту заморозки).
5. Некоторые мелкие млекопитающие, такие как кролик (Oryctolagus cuniculus), крыса (Rattus погуе) и сирийский хомячок (Mesocricetus Auratus) и некоторые другие (????)имеют относительно короткое протромбиновое время, что приводит к быстрому образованию сгустка крови при комнатной температуре.
В некоторых ветеринарных лабораториях, капилляры, иглы и шприцы для забора крови могут быть предварительно гепаринизировали. Всегда проверяйте это перед забором крови, так как гепарин может вызвать изменения в качестве окрашивания и в показателях общей гематологии.
6. Общий объем крови, которые могут быть безопасно собраны обычно составляет от 0,5-1,0% массы тела (МТ). Сбор меньших объемах (0,5% BW) допустим от гериатрических больных (старых) или тех, у кого имеется подозрение на анемию или гипопротеинемия. Собранную кровь либо немедленно исследуют, либо хранят в специализированных микроконтейнерах (BD Microtainer; Becton Dickinson и Компания, Franklin Lakes, NJ). Например, максимальный объем 3,5-7,0 мл крови может быть собрана из 700-граммовой морской свинки (Cavia porcellus).
Небольшие образцы крови могут быть собраны с боковой подкожной вены практически у всех мелких млекопитающих.
Медиальная подкожная вена
• положение животного в вентральном или боковой лежачем положении.
• Необходимо бритье меха или применять спиртовые прогревания местоположения вен для улучшения визуализации.
• Возьмитесь за заднюю ногу чуть выше или ниже, чтобы перекрыть отток крови или наложить жгут, например, резинкой или Пенроуз с натягом с помощью кровоостанавливающего зажима.
• Рекомендуется использование 22 – до 30-иглы на 0,5-1.0-мл шприц, чтобы уменьшить риск венного коллапса.
• В лабораторных условиях, вазелина или силиконовой смазки (McNett Силиконовая смазка 100% Pure силиконовую смазку, McNett корпорации) иногда применяется на вене маленьких пациентов, таких как мыши, чтобы предотвратить одкожное кровотечение. Это помогает облегчению сбора крови в гематокритные трубки.
Вены хвоста.
Небольшие количества крови так же могут быть собраны из боковой вены хвоста у песчанки, крысы и мыши, из задней вену хвоста у крыс или вентральной хвостовой вену. А этих местах обычно берут кровь на сахар с помощью гематокритной трубочки или пластиковой иглы-капиляра. Хвостовые сосуды, как правило, поверхностные, их можно легко увидеть, если животное не очень ослабленное или ожиревшее. Необходимо согреть хвост заранее. Используйте 22 – до 27-иглы на 0.3-1.0-мл шприц. 27 или 25 иглы может также быть помещен в сосуд. Когда есть кровь в ступице иглы, трубки гематокрита могут быть использованы для сбора крови. Не следует помещать хвост в тёплую воду или массировать основание хвоста во время отбора проб, а также принять меры к обеспечению полноценного гемостаза впоследствии. Песчанки склонны к травмам «скальпирующий хвост» и должны рассматриваться особенно тщательно.
Яремная вена.
Забор крови из яремной вены будет зависеть от вида декоративного животного, а также от предпочтений ветеринара, выполняющего забор. Общий наркоз или седация часто необходимы для сбора крови из яремной вены у морской свинки, ежа, поссума и др. Венепункция яремной вены может быть выполнена в сознательном состоянии у хорьков, шиншилл и кроликов, но и в этом случае забор крови под наркозом предпочтителен для пациента и ветеринарного лаборанта, если животное возбуждённое, агрессивное или беспокойное.
Пальпация и фиксация ярёмной вены может быть трудным у ежей, так как вены тонкие, и морских свинкок, так как они имеют очень короткие шеи. Она также может быть затруднено у больных ожирением кроликов или же у пород с большим подвесом. Поиски яремной вены могут также быть предприняты у хомяка, крысы и мыши, но этот способ может быть довольно сложным и требует глубокой седации или общей анестезии.
Бедренная вена.
Для сбора проб крови из бедренной артерии или вены, как правило, самый быстрый метод, который даст наибольшее количество крови у морских свинок, крыс, мышей и хомяков. Это венепункции была описана в литературе наиболее мелких млекопитающих, за исключением хорька, кролик, и песчанки. Общая анестезия, как правило, необходимы для сбора образцов в мелких млекопитающих.
• Положение животного в спинном лежачем положении и расположение нижней части ноги так, что бедренная кость лежит под углом 90 ° к продольной оси тела.
• Пропальпируйте пульс в бедренном треугольнике. Импульс может быть найден немного позади бедренной кости вдоль верхней части бедра. Бедренная артерия проходит параллельно и немного впереди вены. Это оптимальное место, где вены стенки тела соответствует верхней части бедра.
• Направьте 23 – до 27 калибра, 3/4-дюймовый иглу на 1 – и 3-мл шприц иглу перпендикулярно к коже или, по крайней углом 45 ° к бедренной кости.
• Если собранная кровь, ярко-красная, то попали в бедренную артерию, надо тут же начать забор, так как давление на сосуд допустимо лишь в течение 2-5 минут.
Показатели крови в лабораторной диагностике.
Соотношение форменных элементов в крови морских свинок, луговых собачек, дегу и шиншилл 26,7% эритроцитов, 63,3% миелоидных клеток, 4,6% лимфоцитов, и 5,4% ретикулярных клеток. Соотношение белых и красных кровяных телец может варьировать от 1,5 : 1 до 1, 9 : 1.
PCV (%) – гематокрит
RBC количество эритроцитов
Hb (г / дл) – количество гемоглобина
WBC – количество лейкоцитов в крови
Выделенные показатели приведены по работе:
«Гематологические и белковые показатели сыворотки. референтные значения дегу Octodon»
Авторы Мерфи JC , Ниеми С.М., Хьюз KM , Zink M , Fox JG
источник: Американский журнал ветеринарных исследований 39:4 апреля 1978 PG 713-5
Source
American journal of veterinary research 39:4 1978 Apr pg 713-5
https://www.unboundmedicine.com/medline/ … don_degus_
Для сравнения:
Клинические и биохимические показатели крови шиншилл и дегу( в первоисточнике шиншилл и малых шиншилл).
По результатам (R.W. Kirk))
Гематологические и биохимические показатели нормы сыворотки крови:
Гематокрит (%) 27-54
Эритроциты (10х6мл) 5,6 – 8,4
гемоглобин (g%) 11,8 – 14,6
Лейкоциты (103мл) 5,4 – 15,6
Нейтрофилы(%) 39-54
Лимфоциты (%) 45-60
Моноциты (%) 0-5
Эозинофилы (%) 0-5
Базофилы (%) 0-1
АлТ (МЕл) 10-35
ЩФ (МЕл) 6-72
АсТ (МЕл) 96
Общий билирубин (мгдл) 0,6 – 1,28
Са (мгдл) 5,6-12,1
Хлориды (мЭквл) 108-129
Холестерин (мгдл) 50-302
Креатинин (мгдл) 0,4-1,3
Глюкоза (мгдл) 109-194
Фосфор (мгдл) 4-8
Калий (мЭквл) 3,3-5,7
Общий белок (гдл) 3,8-5,6
Альбумины (гдл) 2,3-4,1
Глобулины (гдл) 0,9-2,2
Натрий (мЭквл) 142-166
Азот мочевины (мгдл) 17-45
Возможно все три источника взяты из одного общего, знать бы что из них первоисточник.
по данным Elizabeth V. Hillyer DVM, Katherine Quesenberry DVM MPH Diplomate ABVP «Ferrets, Rabbits, and Rodents: Clinical Medicine and Surgery Paperback”
Последний раз редактировалось Elena N.N 15 мар 2014, 17:32, всего редактировалось 1 раз.