Нормы крови у черепахи

Подвиды

Подразделение данного вида черепах на подвиды является трудным. Вследствие большого ареала, охватывающего три континента, а также размещения их на различных ландшафтах и в разных климатических условиях, биотопы произвели огромное число вариантов. В настоящее время обнаружено по крайней мере двадцать подвидов.

Армянская черепаха

Наиболее известными из них являются:

1. Армянская черепаха
2. Ливийская греческая черепаха
3. Средиземноморская иберийская
4. Мароканская черепаха
5. Черепаха Никольского
6. Иранская черепаха, черепаха Зарудного
7. Testudo graeca graeca
8. Testudo graeca pallasi
9. Testudo graeca terrestris

Лабораторная диагностика заболеваний черепах

В условиях клинической лаборатории можно проводить минимум лабораторных исследований:

• исследование мочи,
• кала,
• клинический и биохимический анализы крови.

Анализы мочи и кала у черепах

Моча может быть получена

• путем сдавливания мочевого пузыря (большой и указательный палец вводятся в ямки между карапаксом и пластоном в основании бедер),
• путем введения катетера в мочевой пузырь,
• путем цистоцентеза (в крайних случаях).

Многие черепахи опорожняют мочевой пузырь рефлекторно при осмотре и болезненных манипуляциях, поэтому при осмотре нужно подставлять чистый лоток для того, чтобы собрать мочу.

При исследовании мочи должны определятся такие показатели, как

• плотность,
• кислотность,
• белок,
• глюкоза,
• кровь,
• наличие и окраска мочевого осадка.

Необходимо производить микроскопию нативного и окрашенного мазка.

При помощи анализа мочи больной черепахи могут быть предположительно установлены нарушения со стороны почек и печени, статус дегидратации, мкб, новообразования клоаки и мочевого пузыря, наличие жгутиковых паразитов и т.д. Наличие в моче живых сперматозоидов – один из способов определения пола у рептилий.

При исследовании кала необходимо обращать внимание на

• цвет,
• консистенцию,
• запах,
• наличие инородных тел.

При исследовании фекальных масс также необходимо проводить микроскопию нативного и окрашенного мазков, исследование материала, обогащенного флотационными методами.

С помощью анализа кала можно предположительно определить дисбактериоз, некоторые бактериальные заболевания, печеночную недостаточность, диагностировать протозоозы и гельминтозы.

Биохимический и клинический анализы крови

Общий объем крови у рептилий составляет приблизительно 5-8 % от массы тела. У черепах он относительно ниже, так как в общей массе тела высока доля костной ткани. Без вреда для животного кровь может быть взята в объеме 1% от массы тела. Взятие крови у черепах для биохимического и клинического исследования лучше всего производить из правой яремной вены (левая редуцирована) (рис.1).

При отсечении когтя, кончика хвоста или пункции венозных синусов происходит загрязнение пробы лимфой, тканевой жидкостью, что в свою очередь приводит к ложному повышению некоторых показателей. В качестве антикоагулянта лучше всего использовать литиевый гепарин, потому что другие антикоагулянты вызывают гемолиз и изменяют такой показатель, как общий кальций крови.

Сразу после взятия часть крови нужно использовать для приготовления тонкого мазка, остальную кровь нужно как можно быстрее отцентрифугировать. Так как нормы, которые публикуют разные авторы, могут значительно отличаться друг от друга, лаборатория должна иметь в своем распоряжении результаты исследований, полученные от клинически здоровых животных данного вида, чтобы охарактеризовать свои «нормы», при этом нужно использовать одинаковые методики, кроме того, нормальные показатели могут варьировать в зависимости от возраста, пола, времени года, условий содержания, кормления и т. д.

По нашему мнению, в биохимический анализ должны входить такие показатели, как

• кальций,
• фосфор,
• натрий,
• калий,
• мочевая кислота,
• креатинин,
• мочевина,
• общий белок,
• аланинаминотрансфераза,
• асапаратаминотрансфераза,
• щелочная фосфатаза.

Биохимический профиль у черепах интерпретируется также, как и у других животных.

В клиническом анализе крови черепах должны определятся такие показатели, как

• гемоглобин,
• общее количество эритроцитов и лейкоцитов,
• гематокрит,
• подсчет лейкоцитарной формулы (гетерофилы, эозинофилы, базофилы, лимфоциты, моноциты).

Выполнение и интерпретация клинического анализа крови является достаточно сложным занятием, требующим специальных методик, опыта выполнения.

Инструментальные методы диагностики болезней черепах

Рентгенография

Рентгенография черепах, по нашему мнению, является наиболее доступным методом исследования в диагностике внутренних незаразных болезней.

С помощью рентгенографии в условиях ветеринарной клиники можно установить:

• переломы конечностей и панциря,
• подагру,
• метастатическую минерализацию,
• фиброзную остеодистрофию,
• пневмонию,
• кишечную непроходимость,
• постовулятивную дистоцию,
• уролитиаз,
• артрит.

Для фиксации животных применяют клейкую ленту, скотч, лейкопластырь.

Для черепах обычно используют три рентгенографические проекции:

• Кранио-каудальная проекция используется для определения границ легочного поля, наличия очагов затенения при пневмонии. (Рис.2)
• Дорсо-вентральная проекция используется для исследования скелета, внутренних органов, исследования пищеварительного тракта при контрастной рентгенографии, определения наличия и положения яиц в целоме. (Рис.3)
• Боковая проекция используется для исследования внутренних органов, уточнения местоположения очагов затенения при пневмонии. (Рис.4)

По данным Васильева Д.Б., для большинства черепах среднего размера практически идеальны параметры съемки- 50 Kv, 15 mA, 400 MA, с фокусным расстоянием 70 см. Мы придерживались таких рекомендаций.

При помощи контрастной рентгенографии желудочного тракта с суспензией сульфата бария или ионорганическими контрастными средствами (Омнипак) устанавливается кишечная непроходимость. (Рис.5)

Эндоскопия

Эндоскопическое исследование черепах применяется с целью диагностической визуализации внутренних органов, взятия биопсийного материала, удаления инородных тел, определения пола, эндоскопической хирургии.

Широкое использование эндоскопии черепах ограничено в основном высокой стоимостью оборудования.

Ареал обитания

Эти черепахи обитают в основном в Северной Африке, небольшие популяции есть также на юге Испании и на Балеарских островах. Черепаха встречается в сухих степях и полупустынях, разреженных низменных лесах, а также на склонах гор, покрытых кустарниками.

На территории России обитает на ограниченной территории в предгорьях Краснодарского края и Республики Дагестан.

Вид внесен:

• в международный список охраняемых видов (IUCN Red List of Threatened Animals);
• в Красную книгу РФ в категории «1», как «вид с неуклонно сокращающейся численностью, отдельные популяции которого находятся на грани исчезновения«;
• в региональные Красные книги Краснодарского края и Республики Дагестан.

Черепахи, обитающие на западном Кавказе в пределах Краснодарского края и Республики Абхазия, выделены в самостоятельный подвид черепаха Никольского (T. graeca nikolskii). На территории Республики Дагестан (северный Кавказ) обитает подвид T. graeca pallasi.

Средиземноморские черепахи предпочитают жить в лесистой местности, которая в настоящее время практически уничтожена в результате сельскохозяйственной деятельности человека, — леса выжигаются, а земли используются под пастбища.

Размножение

Период размножения у средиземноморских черепах начинается в начале весны и продолжается до начала лета, в зависимости от подвида. При содержании в неволе самцы проявляют половую активность до августа, но самки после такого позднего спаривания яйца не откладывают. В природе брачные церемонии черепах проходят на полянах, опушках и других открытых площадках. Часто там можно услышать приглушенные цокающие звуки.  Это самец заявляет о своей симпатии к самке, пряча голову вглубь панциря и ударяя по ее панцирю несколько раз.

Начиная с конца июня, самки начинают откладывать яйца: выкапывают неглубокую ямку в мягком грунте, и кладут в нее от 3 до 10 круглых белых яиц, весом до 25 граммов. За один брачный сезон самка может отложить яйца трижды, т.е. за лето около 15 яиц. Сделав кладку, самка закапывает ее и несколько раз проползает по поверхности. На этом ее материнские обязанности завершаются.

Черепашата начинают выходить из яиц с июля и до середины сентября. Больше всего детенышей средиземноморской черепахи появляется в середине августа. Черепашка в яйце полностью сформировывается через 2,5 – 3 месяца. Необходимое условие – влажная земля и теплые солнечные лучи.

Верхняя челюсть черепашек заканчивается острым шипом – так называемым яйцевым зубом, которым они прокалывают скорлупу яйца, а потом, поворачиваясь по кругу, вскрывают ее, как консервную банку. Далее, они расширяют образовавшуюся щель лапками и покидают скорлупу. Большинство из вылупившихся черепашек не выползают на поверхность, а закапываются в грунт и проводят зиму рядом с гнездовой камерой. Наружу подросшие молодые черепашки выходят весной.

Перезимовавшие черепашата имеют маленькие размеры: не окрепший панцирь достигает длины 3-4 см, а вес – примерно 15 граммов. Через полгода они вырастают до 7 см, и достигают веса 80 граммов.

Большинство зоопарков, а также некоторые опытные любители с успехом разводят средиземноморских черепах в неволе.

Среднеазиатские черепахи в космосе

В 1968 году на борту советского беспилотного космического аппарата «Зонд-5», облетевшего вокруг Луны, находились две среднеазиатские черепахи, которые вернулись живыми и похудевшими на 10 %. Одна из черепах лишилась глаза из-за перегрузок при входе в атмосферу, доходивших до 20 g. Эти черепахи стали первыми живыми существами, долетевшими до Луны. Впоследствии среднеазиатские черепахи отправлялись в космос на борту лунных космических аппаратов «Зонд-6» (разбился при посадке на Землю), «Зонд-7» и «Зонд-8» (благополучно вернулись). Выбор среднеазиатских черепах в качестве объектов космических экспериментов был связан с тем, что из-за замедленного обмена веществ в течение полёта их не надо было поить и кормить.

Питание

В природе среднеазиатская черепаха питается растениями пустыни, бахчевыми культурами, всходами многолетних трав и кустарников, ягодами и падалицей фруктов в садах. Дома черепах можно кормить разнообразной растительной пищей — сорные травы, зелень, некоторые домашние растения (алоэ, толстянка, очиток и т.д.), реже – овощи. Животный корм, фрукты и ягоды недопустимы. Необходимо также давать черепахам витамины и минеральные вещества (кальций). В тесном террариуме черепахи больше портят корма, чем съедают, а затоптанную пищу предпочитают не есть. Регулярное питье среднеазиатским черепахам не нужно. Ставить в террариум плошки с водой бессмысленно: затопчут, разольют, перевернут. Практичнее 1-2 раза в неделю устраивать черепахам банный день, при этом температуру воды следует поддерживать на уровне 30-32 градусов. Молодых черепашек надо кормить смесями мелко нарезанных растений и трав с примесью витаминно-минеральной подкормки через день; тех, что постарше — раз в 3 дня. Количество корма — приблизительно с половину панциря. Емкость с пищей ставится ровно на 1 час, после чего убирается, независимо от того, был ли съеден весь корм.

Лечение черепах

До начала лечения животного необходимо провести диагностику. Диагностика болезней черепах является достаточно сложной и трудоемкой процедурой, но от этого зависит правильный выбор лечения.

Среди особенностей этой группы животных хотелось бы подчеркнуть:

• непостоянную температуру тела, зависящую от температуры окружающей среды;
• уникальное строение костной системы (наличие панциря, нахождение плечевого и тазового поясов конечностей внутри панциря);
• отсутствие грудной клетки (дыхание происходит не за счет отрицательного давления в грудной клетке, а за счет сокращения мышц, идущих от плечевого и тазового пояса к пластону, мускулатуры легких, движений головы и передних лап);
• особенности строения сердечно-сосудистой системы (наличие трехкамерного сердца, особенности и топографии ветвления сосудов, наличие воротной системы почек) и т.д.

Помимо внешнего осмотра и физикального исследования, особая роль в диагностике болезней черепах в условиях клиники отводится  лабораторной и инструментальной диагностике.

Размножение

Для размножения требуется пара черепашек приблизительно одного возраста и веса. Самок отличают от самцов по форме хвоста — если у черепашки хвост более длинный и широкий у основания — значит это самец, у самцов среднеазиатской черепахи часто присутствует вмятина на пластроне ближе к хвосту. У самцов клоака расположена дальше по хвосту, чем у самок. У самок пластрон — плоский, хвост короткий за счет размещения в их клоаке яйцевода, без утолщения. Клоака расположена около конца карапакса, то есть практически у основания хвоста. Часто самцы мельче самок. Половозрелости черепахи достигают: самки с 10-12 лет, самцы с 5-6 лет. Спариваются черепахи с февраля по август. Длительность вынашивания яиц 2 месяца, после чего самка откладывает от 2 до 6 яиц. Инкубация при температуре 28-30°С длится 60-65 дней.

Раздел ветеринарной медицины, изучающий болезни рептилий и амфибий, который можно было бы назвать ветеринарной герпетологией стал бурно развиваться с конца 70-х годов. Это явилось следствием развития террариумистики, под влиянием моды на террариумных животных и переориентации международного зооторгового рынка на низших позвоночных, прежде всего, из-за ужесточения норм ввоза для птиц и млекопитающих. Результатом стала целая серия публикаций по этому вопросу, включая фундаментальные книги монографического плана.

Однако, большинство относительно доступной у нас западной литературы в основном ориентирована на пользователя, т.е. любителя-террариумиста или, в крайнем случае, на специалиста-герпетолога, а не на ветеринарного врача. Все такие книги имеют один существенный недостаток: в них болезнь обычно скрывается по внешним симптомам и приводится терапевтическая схема, а методы диагностики, особенно сложные, игнорируются.

В результате врач, использующий литературу подобного рода в качестве пособия, ставит диагноз только по аналогии, не прибегая к дифференциальной диагностике. Это, судя по нашему опыту, часто приводит к существенным врачебным ошибкам.

Данное сообщение касается болезней черепах. Во-первых, эта группа наиболее распространена в неволе, и во-вторых, в практике с этими животными традиционные методы исследований наиболее затруднены из-за особенностей физиологии черепах и наличия панциря. Несмотря на то, что для диагностики внутренних болезней черепах применялись самые разные методы исследований, включая компьютерную томографию, УЗИ, метод магнитного резонанса, эндоскопию, ЭКГ, изотопный анализ и некоторые другие, мы остановимся только на тех, которые можно применять в рутинной клинической практике.

При оценке общего состояния черепах особенно важно определить массу тела и ее соответствие нормам. Для некоторых видов были предложены так называемые “кривые Джексона”, показывающие нормальные соотношение массы черепахи и длины ее панциря. Однако, для видов обычных на нашем зооторговом рынке эта формула – 0,15 L3 не подходит. В принципе, здоровая черепаха весит столько же, сколько вода аналогичного объема и должна тонуть при выдохе. При определенном навыке существенное отклонение массы можно определить просто при взвешивании черепахи на руке. Для взрослых среднеазиатских черепах более приемлема полученная нами формула 0,3 L3. Этой формулой следует пользоваться для определения избыточного веса, что обычно связано с развитием целомического отека или скоплением мочи в мочевом пузыре.

Пальпацией определяют размягчение панциря, травмы, опухоли и т.д. Бимануально в области паховых ямок можно определить уролиты или колебания сформированных яиц у беременных самок. Ценный материал может дать внутренняя пальпация, осуществимая у черепах с размером панциря более 15 см. Этим способом можно определить гипертрофию почек, уролиты, беременность, копростаз, новообразования в клоаке. Этим же способом у крупных черепах получают мочу. Аускультацию легких проводят через влажную ткань и также у достаточно крупных особей. При этом, когда черепаха втягивает голову, трахея принимает S-образную форму и прилегает своим основанием вплотную к нижнему панцирю. Поэтому при аускультации нижнего панциря обычно слышны только шумы в гортани. При аускультации карапакса можно услышать, сравнивая поля обоих легких, истинные легочные хрипы или крепитацию при пневмонии II стадии. При “влажной” пневмонии влажные разнокалиберные хрипы обычно слышны не из легких, а из дистального отдела трахеи. В этом случае не будет ощущаться разницы между шумами со стороны каждого легкого.

Мочу у черепах можно получить катетером, который вводят в клоаку наиболее вентрально, либо при пункции мочевого пузыря. Моча всасывается в мочевой пузырь из клоаки через его шейку и может сохраняться долгое время (месяцы), поэтому исследовать мочу следует в динамике, так как изменения могут иметь экстраренальный характер. Полученную мочу следует перемешать и раздавленную каплю исследовать в поляризованном свете для определения нетипичных кристаллов (оксалатов, уратов аммония и фосфатов). Этим же методом исследования определяют подвижных трофозоидов Hexamita parva, балантидиев и яйца трематод и капиллярий. Часть мочи следует отцентрифугировать, взять пипеткой клеточный осадок, сделать тонкий мазок и окрасить его по Гимзе после фиксации метанолом для цитологических исследований. Остальную мочу можно исследовать экспресс-методом. На наш взгляд, наиболее существенны изменения следующих параметров: белок – стойкое повышение более 100 мг/дл обычно указывает на подагру или патологию со стороны почек; рН – в норме кислая, 5,5-6. Сдвиг в щелочную сторону обычно характеризует застой в мочевом пузыре, но может свидетельствовать и о подагре или почечной недостаточности; плотность – в норме высокая, 1025-1030. Снижение плотности может указывать на формирование уролита или задержку твердой фракции мочи. Стойкое снижение до 1005-1010 при параллельной остеомаляции и геморрагии указывает на почечную недостаточность. глюкоза – в норме отсутствует.

Так как у черепах до настоящего времени не выявляли истинного сахарного диабета, глюкозурию следует считать алиментарной, что обычно имеет место при кормлении молоком и сладкими фруктами. В редких случаях это является следствием некротического энтероколита. биливердин – основной желчный пигмент у рептилий и птиц, обуславливающий желто-зеленую окраску твердой фракции мочи. Биливердинурия обычно указывает на патологию со стороны печени или инфекцию урогениталыюй сферы.

Исследование крови обычно проводят у черепах достаточного размера, так как необходимое количество крови (1% от массы тела) можно получить только у крупных особей. Взятие крови осуществляют методом пункции яремной, плечевой вены и вены лопатки; пункции орбитального, постокципитального и копчикового синусов, кардиоцентеза и отсечения кончика хвоста или когтя. Кроме пункции яремной вены, которую можно осуществить под визуальным контролем, и кардиоцентеза все остальные методы могут вызвать загрязнение крови лимфой или тканевой жидкостью. В таком анализе могут значительно изменяться некоторые биохимические показатели. Так, плазменный калий и фосфор увеличиваются в 2 раза, уровень КФК может возрастать более, чем в 10 раз, кальций падает в 1,5 раза и глюкоза – в 2 раза. При разбавлении крови лимфой резко падает общий белок, гематокрит и количество эритроцитов. При загрязнении тканевой жидкостью повышается количество лейкоцитов, возрастает уровень ACT и мочевой кислоты. После правильного взятия крови (лучше без применения антикоагулянтов) приготавливают тонкий мазок, окрашенный сначала по Май-Грюнвальду, а затем по Гимзе (в зарубежной практике – по Райту) и исследуют под иммерсией. Так как все форменные элементы крови черепах имеют ядра, при их дифференциации (особенно лимфоцитов, тромбоцитов и азурофильных моноцитов) возникают определенные сложности.

Для проведения цитологических исследований нужен определенный опыт. Особенные трудности возникают при подсчете общего количества лейкоцитов, так как общепринятые методы (с уксусной кислотой и метиленовой синью) не разрушают эритроциты и тромбоциты, что делает подсчет лейкоцитов невозможным. Наиболее удобным, хотя и трудоемким, является прямой метод Натта и Гаррика (1958) и непрямой метод с флоксином В. При использовании последнего – эозинофилы и азурофилы окрашиваются в красный цвет. После подсчета их абсолютного количества определяют общее количество лейкоцитов при условии, что процент этих клеток в L-формуле уже определен. Следует отметить, что нормальные показатели количества эритроцитов и L-формула у черепах подвержены значительным сезонным флуктуациям, поэтому кровь следует исследовать в динамике. Остальную часть крови сразу же помещают в центрифужную пробирку с антикоагулянтом (лучше использовать литиевый гепарин, так как цитрат и ЭДТА у рептилий вызывают гемолиз). Часть крови отбирают для определения PCV микрогематокритовым методом, а оставшуюся часть центрифугируют и отделяют плазму для биохимического исследования и определения: электролитов. Если посылать в лабораторию цельную гепаринизированную кровь, то в связи с активным метаболизмом эритроцитов и частичным гемолизом в анализе существенно изменяются несколько параметров.