Нормы крови у цыплят
Биохимический профиль крови кур-несушек.
Биохимический анализ крови дает возможность ознакомиться с характером работы внутренних органов, выявить патологии в жировом, белковом, углеводном обмене. При помощи биохимического анализа крови возможно получить обширную картину состояния здоровья животного.
Гематологическое исследование крови является одним из важнейших диагностических методов, тонко отражающих реакцию кроветворных органов при воздействии на организм различных физиологических и патологических факторов. Во многих случаях оно играет большую роль в постановке диагноза, а при заболеваниях системы кроветворения ему отводится ведущая роль.
Гематологические показатели крови
эритроциты 3,0-4,0 (1012/л)
лейкоциты 20,0-40,0 (109/л)
тромбоциты 32-100 тыс
гемоглобин 80-120 г/л
цветной показатель 2-4
гематокрит 38-42%
Лейкограмма:
базофилы 1-3%
эозинофилы 6-10%
псевдоэозинофилы 24-30%
лимфоциты 52-60%
моноциты 4-10%
Физические и биохимические показатели крови птиц
Общее кол-во крови:
к весу тела 6-7%
кол-во крови на кг/веса тела 78-90мл
удельный вес крови 1,050-1,058
вязкость крови 4,5-5,5
осмотическое давление крови 0,610-0,620
рН крови 7,4-7,44
резервная щелочность плазмы крови 48-52 (об.%СО2)
плотность крови 1,044
объем крови к массе тела курица 6,0-9,0%
объем крови к массе тела петух 9,2-10,0%
Гемоглобин кур, как и большинства других птиц, представлен двумя фракциями – Нb A и Hb D. Их соотношение выражено в пропорции 3:1. Доминирующим является гемоглобин А, тогда как гемоглобин D является минорным, содержание его в норме в периферической крови не превышает 30%. Для исследования гетерогенной системы гемоглобина используется метод электрофореза в полиакриламидном геле.
Эритроциты птиц овальные, содержат ядро, которое образует двухстороннюю выпуклость.
Тромбоциты имеют форму веретена с тупыми концами. Ядро находится в центре, пикнотично и имеет слабовыраженную сетчатость.
Лейкоциты несколько меньшего размера, чем у млекопитающих.
Базофилы – клетки круглой формы, ядра имеют несколько сегментов.
Эозинофилы – круглые клетки. Ядра по форме как у базофилов.
Лимфоциты – клетки величиной 5-10 мкм, ядра круглые.
Моноциты величиной 11-15 мкм, ядро бобовидной или лопастной формы.
Относительная плотность крови у здоровых кур колеблется в следующих пределах (г/см3 или в единицах СИ, кг/л): 1,039 – 1,057; (1,050 – 1,058).
Увеличение относительной плотности крови бывает при сгущении ее (диарея, рвота, полиурия, лихорадка, непроходимость кишечника, нефрит и др.), а уменьшение – при анемиях, гемолитической желтухе, гидремии (разжижении крови вследствие обильного приема воды).
Проточная цитометрия является объективным методом количественного анализа и используется в автоматизированной диагностике патологических процессов на основе регистрации отклонений от нормы общего содержания ДНК в клетке. Проточный цитометр осуществляет распределение клеток, находящихся в различных фазах клеточного цикла.
Определение белковых фракций. Изменение белковых фракций обуславливает диспротеинемию, выражением которой является белковый коэффициент (отношение количества альбуминов к сумме глобулинов). В норме оно составляет 0,9:1,4
Алгоритм диагностики нарушений обмена веществ у лактирующих коров.
Особенности аминокислотного питания моно- и полигастричных животных
Аминокислотное питание животных – восполнение содержания аминокислот, истраченных организмом на поддержание физиол. функций, и обеспечение потребностей ж-ных в этил в-вах для образования новых тканей и продукции за счёт аминокислот корма. Из 20 аминокислот — составных частей белков корма и тканей — для моногастричных ж-ных 10 (для птиц 11) считаются незаменимыми. Они не синтезируются в организме ж-ных или синтезируются в небольшом кол-ве. При отсутствии или недостатке в корме одной или неск. незаменимых аминокислот невозможен синтез полноценных белков в организме, нарушается обмен в-в, снижаются продуктивность и плодовитость ж-ных, замедляется рост молодняка. Потребность в аминокислотах у разных видов с.-х. ж-ных неодинакова.
Если микрофлора преджелудков взрослых жвачных (рог. скот, верблюды и др.) способна синтезировать все необходимые организму аминокислоты из аммиака, выделяющегося при распаде белка или небелковых азотистых соединений (руминогепато циркуляция азота), то высокую продуктивность нежвачных ж-ных (свиньи, птица и др.), в организме к-рых аминокислоты не синтезируются, можно поддерживать, лишь сбалансировав рационы по аминокислотному составу.
Для свиней незаменимы лизин, метионин, триптофан, аргинин, гистидин, лейцин, изолейцин, фенилаланин, треонин, валин; для птиц, кроме того, — глицин. Для регулирования А. п. ж-ных необходимо знать их потребность в аминокислотах (см. Норма кормления) и аминокислотный состав кормов. Животные корма содержат все незаменимые аминокислоты, в растительных кормах нек-рых из них обычно недостаёт. Практически в рационах для свиней чаще всего не хватает лизина, иногда (кукурузные рационы) лизина и триптофана; в рационах для птиц — метионина и лизина. Молодняк по сравнению со взрослыми ж-ными больше нуждается в аминокислотах. Пром-сть выпускает для жив-ва синтетич. аминокислоты, к-рые можно использовать в качестве добавок к рационам (в точно рассчитанных дозах и в смеси с концентратами). При достаточном содержании в рационе заменимых аминокислот, а также при повышении калорийности рациона потребность в незаменимых аминокислотах уменьшается. Сбалансированные по аминокислотному составу рационы наиб. эффективны при содержании протеина в органич. в-ве в кол-ве, соответствующем потребности ж-ного. Значительно повышает использование аминокислот введение в рацион необходимого кол-ва витаминов и микроэлементов
Румино-гепато-циркуляция азота. Особенности азотистого (белкового) обмена у полигастричных. В нём принимают участии бактерии преджелудков. Они вырабатывают ферменты, которые гидролизуют белки до аминокислот, другие бактерии их дезаминируют (NH2), то есть образуется аммиак. Часть аммиака используется микробами рубца для синтеза белка своего тела, а часть поступает в печень, где аммиак превращается в мочевину. Мочевина, которая образовалась в печени, поступает в кровь , оттуда транспортируется в слюнные железы, а в качестве слюны снова поступает в рубец. Под действием уреазы мочевина распадается на аммиак и воду. А углеродный остаток аммиака становится ЛЖК.
Это используется для учёта подкормок, которые компенсируют отсутствие белка в корме. Клетчатка в рубце под влиянием целлюлозолитических ферментов доводится до глюкозы, в рубце она тут же сбраживается микробами, за счёт чего они получают много энергии, продукты их жизнедеятельности образуют ЛЖК и те всасываются в кровь. ЛЖК – уксусная кислота, пропионовая, 10% маслянная кислота.
Уксусная кислота уходит в печень и молочную железу, где включается в синтез жиров, что влияет на жирность молока. Пропионовая участвует в обмене белков
Биохимический профиль крови кур-несушек.
Биохимический анализ крови дает возможность ознакомиться с характером работы внутренних органов, выявить патологии в жировом, белковом, углеводном обмене. При помощи биохимического анализа крови возможно получить обширную картину состояния здоровья животного.
Гематологическое исследование крови является одним из важнейших диагностических методов, тонко отражающих реакцию кроветворных органов при воздействии на организм различных физиологических и патологических факторов. Во многих случаях оно играет большую роль в постановке диагноза, а при заболеваниях системы кроветворения ему отводится ведущая роль.
Гематологические показатели крови
эритроциты 3,0-4,0 (1012/л)
лейкоциты 20,0-40,0 (109/л)
тромбоциты 32-100 тыс
гемоглобин 80-120 г/л
цветной показатель 2-4
гематокрит 38-42%
Лейкограмма:
базофилы 1-3%
эозинофилы 6-10%
псевдоэозинофилы 24-30%
лимфоциты 52-60%
моноциты 4-10%
Физические и биохимические показатели крови птиц
Общее кол-во крови:
к весу тела 6-7%
кол-во крови на кг/веса тела 78-90мл
удельный вес крови 1,050-1,058
вязкость крови 4,5-5,5
осмотическое давление крови 0,610-0,620
рН крови 7,4-7,44
резервная щелочность плазмы крови 48-52 (об.%СО2)
плотность крови 1,044
объем крови к массе тела курица 6,0-9,0%
объем крови к массе тела петух 9,2-10,0%
Гемоглобин кур, как и большинства других птиц, представлен двумя фракциями – Нb A и Hb D. Их соотношение выражено в пропорции 3:1. Доминирующим является гемоглобин А, тогда как гемоглобин D является минорным, содержание его в норме в периферической крови не превышает 30%. Для исследования гетерогенной системы гемоглобина используется метод электрофореза в полиакриламидном геле.
Эритроциты птиц овальные, содержат ядро, которое образует двухстороннюю выпуклость.
Тромбоциты имеют форму веретена с тупыми концами. Ядро находится в центре, пикнотично и имеет слабовыраженную сетчатость.
Лейкоциты несколько меньшего размера, чем у млекопитающих.
Базофилы – клетки круглой формы, ядра имеют несколько сегментов.
Эозинофилы – круглые клетки. Ядра по форме как у базофилов.
Лимфоциты – клетки величиной 5-10 мкм, ядра круглые.
Моноциты величиной 11-15 мкм, ядро бобовидной или лопастной формы.
Относительная плотность крови у здоровых кур колеблется в следующих пределах (г/см3 или в единицах СИ, кг/л): 1,039 – 1,057; (1,050 – 1,058).
Увеличение относительной плотности крови бывает при сгущении ее (диарея, рвота, полиурия, лихорадка, непроходимость кишечника, нефрит и др.), а уменьшение – при анемиях, гемолитической желтухе, гидремии (разжижении крови вследствие обильного приема воды).
Проточная цитометрия является объективным методом количественного анализа и используется в автоматизированной диагностике патологических процессов на основе регистрации отклонений от нормы общего содержания ДНК в клетке. Проточный цитометр осуществляет распределение клеток, находящихся в различных фазах клеточного цикла.
Определение белковых фракций. Изменение белковых фракций обуславливает диспротеинемию, выражением которой является белковый коэффициент (отношение количества альбуминов к сумме глобулинов). В норме оно составляет 0,9:1,4
Аграрная наука, образование, производство: актуальные вопросы: Сб. тр. всероссийской науч.-практич. конф. с междунар. участием / МСХ РФ, ФГБОУ ВПО «НГАУ», Томский сельскохозяйственный институт-филиал ФГБОУ ВПО «НГАУ». – Новосибирск, 2014. – Вып. 16. – С. 33–36.
УДК 619.636.5
МОРФО-БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ БРОЙЛЕРОВ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ БЕТУЛИНА
Задорожная М.В.
ГНУ Сибирский научно-исследовательский институт птицеводства Россельхозакадемии, Омская область,
Данный адрес e-mail защищен от спам-ботов, Вам необходимо включить Javascript для его просмотра.
Птицеводство является одной из наиболее приоритетных отраслей сельского хозяйства. В настоящее время в производстве широко применяются препараты для ускорения роста и откорма птицы, однако не все они являются безопасными и при этом достаточно эффективными. Поэтому так важен поиск новых недорогих, экологически чистых биологически активных добавок. Одним из перспективных препаратов является бетулин. Бетулин (от лат. betula – береза) – пентациклический тритерпеновый спирт ряда лупана, один из основных компонентов коры различных видов березы. Он обладает ценнейшими фармакологическими свойствами (противовоспалительным, антивирусным, иммуностимулирующим, гепатопротекторным, желчегонным и др.).
Анализ литературы показал, что комплексное влияние бетулина на организм цыплят-бройлеров изучено недостаточно. Цель работы: изучитьвлияниебетулина на морфологические, биохимические показатели крови цыплят-бройлеров.
Материалы и методы.Исследования проведены в ГНУ СибНИИП Россельхозакадемии. Из суточных цыплят-бройлеров кросса «Сибиряк 2С» по принципу аналогов были сформированы 3 опытные и контрольная группы по 100 голов в каждой. Нормы кормления и содержания соответствовали методическим рекомендациям по работе с птицей. Кормосмеси готовились в условиях кормоцеха. Кормление осуществлялось вручную. В экспериментах использован бетулин в форме порошка и суспензии, которые вводили в кормосмесь в дозе 120 и 240 мг/кг корма (1-я и 3-я группы соответственно) и в воду в дозе 120 мг/кг корма ( 2-я группа) ежедневно в возрасте 1-14 дней. Учитывали следующие показатели: эритроциты, лейкоциты, гемоглобин, общий белок, альбумины, глобулины. Подсчет эритроцитов и лейкоцитов проводили в камере Горяева. Содержание гемоглобина определяли гемихромным методом наборам «Гемосо-Ново» производства ЗАО «Вектор Бест» (Россия). Количество общего белка в сыворотке крови цыплят определяли биуретовым, альбумина — бромкрезоловым методами наборам Hospitex diagnostics (Италия). Учет результатов осуществляли с помощью спектрофотометра Elх800. Результаты исследований подвергнуты обработке методами математической статистики, принятыми в биологии и медицине с использованием программы Microsoft Excel 2000 и критериев Стьюдента.
Результаты исследований. Количество эритроцитов и гемоглобина в крови цыплят-бройлеров контрольной и опытных групп в исследуемые возраста находилось в пределах физиологической нормы (табл. 1). В возрасте 14, 21, 28, 35 и 42 дней количество эритроцитов в опытных группах на 8,8-17,5%, 2,3-11,6%, 14,8-32,5%, 4,3-8,9% и 23,1-38,7% соответственно выше контроля. Наибольшее число эритроцитов в возрасте 28 и 42 дня было в 1-й опытной группе, где препарат задан с кормом.
Количество гемоглобина в возрасте 14-ти дней у цыплят опытных групп на 14,5-16,5% превышало контроль.
Таблица 1
Влияние бетулина на гематологические показатели крови цыплят-бройлеров
Группа | Показатели | Возраст, дней | ||||
14 | 21 | 28 | 35 | 42 | ||
Контрольная | Эритроциты, х1012/л | 1,7 | 1,9 | 2,0 | 2,4 | 1,8 |
Гемоглобин, г/л | 67 | 83 | 82 | 106 | 83 | |
Лейкоциты, х109/л | 37 | 25 | 51 | 68 | 82 | |
1 опытная | Эритроциты, х1012/л | 1,9 | 2,1 | 2,7 | 2,6 | 2,5 |
Гемоглобин, г/л | 78 | 94* | 88 | 121 | 97* | |
Лейкоциты, х109/л | 38 | 35 | 82 | 85 | 86 | |
2 опытная | Эритроциты, х1012/л | 1,9 | 2,0 | 2,4 | 2,6 | 2,4 |
Гемоглобин, г/л | 83 | 96* | 84 | 111 | 96 | |
Лейкоциты, х109/л | 29 | 28 | 65 | 59 | 77 | |
3 опытная | Эритроциты, х1012/л | 2,0 | 2,1 | 2,4 | 2,5 | 2,4 |
Гемоглобин, г/л | 78 | 92 | 87 | 108 | 91 | |
Лейкоциты, х109/л | 21 | 32 | 60 | 66 | 81 |
Примечание. * – Р < 0,05
В возрасте 21 день показатели опытных групп на 9,8-14,3% превышали контроль. Достоверная разницу с контролем на 13,6 и 14,3% была соответственно 1-й (Р<0,05) и 2-й (Р<0,05) групп, получавших препарат в одинаковой дозе, но разные способы применения. В 28, 35 и 42 дня показатели опытных групп на 1,8-7,5%, 1,7-13,8% и 7,8-17,2% соответственно превышали контроль, при достоверной разнице на 17,1% (Р<0,05) в 42 дня в 1-й группе.
Количество клеток белой крови у цыплят всех групп находилось в пределах физиологической нормы. Вместе с тем в возрасте 14 дней количество лейкоцитов 1-й группы было на 2,6% больше, чем в контрольной, а во 2-й и 3-й группах ─на 23,3% и 46,6% соответственно ниже контроля. Такая же картина была в возрасте 28, 35 и 42 дня. В 21 день количество лейкоцитов в опытных группах на 10,2-36,7% превышало контроль, а максимальное их количество было в 1-й группе, которое на 36,7% превышало контроль. На протяжении всего исследования достоверной разницы между опытными и контрольной группами не выявлено.
Биохимические показатели сыворотки крови у цыплят всех групп находились в пределах физиологической нормы (табл. 2). Количество общего белка в возрасте 7 дней в опытных группах было на 5,6-12,3% выше контроля. В возрасте 14 и 21 день в опытных группах показатели на 7,9-27,8% и 6,6-16,9% соответственно превышали контроль. Наибольшие показатели у цыплят 1-й группы, где бетулин давали с кормом в дозе 120 мг/кг живой массы.
Таблица 2
Влияние бетулина на биохимические показатели сыворотки крови цыплят-бройлеров
Группа | Показатели | Возраст, дней | ||||
14 | 21 | 28 | 35 | 42 | ||
Контрольная | Общий белок, г/л | 24,6 | 29,1 | 33,0 | 41,5 | 37,9 |
Альбумин, г/л | 10,6 | 13,5 | 12,5 | 16,6 | 13,7 | |
Глобулины, г/л | 14,0 | 15,5 | 20,4 | 24,9 | 24,2 | |
1 опытная | Общий белок, г/л | 31,4 | 34,0 | 40,3* | 44,2 | 41,1 |
Альбумин, г/л | 13,1 | 15,6 | 14,7* | 17,0 | 15,7** | |
Глобулины, г/л | 18,4 | 18,4 | 25,7 | 27,3 | 25,3 | |
2 опытная | Общий белок, г/л | 30,1 | 31,0 | 40,4* | 43,0 | 40,6 |
Альбумин, г/л | 12,3 | 15,4 | 13,1 | 17,5 | 15,2* | |
Глобулины, г/л | 17,8 | 15,6 | 27,3 | 25,6 | 25,4 | |
3 опытная | Общий белок, г/л | 26,6 | 32,1 | 38,9 | 42,2 | 40,0 |
Альбумин, г/л | 11,1 | 14,4 | 13,0 | 17,1 | 14,6 | |
Глобулины, г/л | 15,5 | 17,7 | 26,0 | 25,1 | 25,4 |
Примечание. * – Р < 0,05; ** Р < 0,01
В возрасте 28 и 35 дней регистрировали повышение показателей во всех группах, при этом в опытных они были на 18,2-22,6% и 1,7-6,6% соответственно выше контроля. Достоверная разница в 1-й и 2-й групп в возрасте 28 дней. В 42 дня регистрировали снижение показателей во всех группах, при этом в опытных группах они были на 5,4-8,3% выше контроля.
Анализ полученных данных указывает на положительное влияние бетулина на обменные процессы в организме цыплят-бройлеров, в частности на белковый обмен веществ, повышает количество общего белка в сыворотке крови цыплят в 1, 2 и 3-й группах на 7-28%, 4-23% и 2-18% соответственно.
Количество альбумина (белка, синтезируемого в клетках печени) в возрасте 7 дней во всех опытных группах на 3,1-4,7% выше контроля. Наибольшее количество было в 1-й группе, где препарат давали с кормом. В возрасте 14 и 21 день разница с контролем продолжала увеличиваться, опытные группы превышали контроль на 4,4-23,5% и 6,5-14,9% соответственно. Максимальные показатели были в 1-й и 2-й группах. В 28 дней количество альбумина снизилось во всех опытных группах, при этом опытные группы превышали контроль на 3,5-17,1%. Достоверная разница с контролем была в 1-й группе (Р < 0,05). Несмотря на прекращения применения бетулина сохранялась тенденция превосходства показателей в опытных группах по сравнению с контролем. Достоверную разницу отмечали в возрасте 42 дня в 1-й группе (Р < 0,01) и во 2-й (Р < 0,05), где доза препарата одинаковая, способ введение препарата в 1-й – с кормом, во 2-й – с водой. Наибольшие количество альбумина было в 1 группе, разница с контролем на 14,7%. Показатели 3-й группы на протяжении всего опыта выше контроля, но не превышали значений 1-й и 2-й групп.
Использование бетулина повышает функциональную работу печени, стимулирует синтез альбумина, повышая его количество на 14,7 и 10,9% при применении препарата в дозе 120 мг/кг живой массы с кормом (1-я группа) и водой (2-я группа).
Общее количество глобулинов в возрасте 7 дней опытных групп выше контроля на 7,1-19,8%. Наиболее высокий уровень наблюдается в 1-й и 2-й группах, который на 16,5 и 19,8% превышал контроль. В 14 дней отмечали увеличение глобулинов во всех опытных группах на 10,7-31,1% по сравнению с контролем. Самый высокий показатель среди опытных групп отмечен в 1-й группе, где бетулин применяли с кормом.В 21 день количество глобулина во всех опытных группах на 0,2-18,6% выше контроля, при наиболее высоком в 1-й группе. В возрасте 28 дней количество глобулинов опытных групп на 25,5-33,5% превышало контроль. Достоверная разница была во 2-й опытной группе, где доза была 120 мг/кг с водой. При дальнейших исследованиях регистрировали как повышение, так снижение глобулина, достоверной разницы с контролем не выявлено.
Выводы. Применение бетулина оказывает стимулирующее влияние на кроветворение, повышает количество эритроцитов и гемоглобина, тем самым улучшает оксигенацию крови и организма в целом, способствуя ускорению обменных процессов.
Использование бетулина улучшает работу печени, стимулирует синтез альбумина, увеличивая его количество на 14,7 и 10,9% при применении препарата в дозе 120 мг/кг живой массы с кормом (1-я группа) и водой (2-я группа). Повышает количество общего белка в сыворотке крови цыплят 1, 2 и 3-й групп на 7-28%, 4-23% и 2-18% соответственно.
Список литературы.
Болотников И.А. Физиолого-биохимические основы иммунитета сельскохозяйственных птиц / И.А.Болотников, Ю.В. Конопатов. – Л.: Наука, 1987. – 164 с.
Болотников И.А. Гематология птиц / И.А. Болотников, Ю.В. Соловьев. -Л.: «Наука», 1980. 116 с.
Голдырев А.А. Бетулин и его влияние на состояние здоровья собак /А.А. Голдырев [и др.] // Аграрная наука. – 2007. – №11. – С. 26-28.