Нормы крови у мышей

Нормы крови у мышей thumbnail

Домашние мыши, как и любые другие домашние животные, страдают от многих недугов. И поставить диагноз только на основе визуального осмотра удается далеко не всегда.

На помощь ветврачам приходят современные диагностические методы, в том числе анализы.

Их назначают при подозрениях на практически любую болезнь, так как отклонения от нормы наглядно демонстрируют наличие патологий.

Ветеринарная лаборатория

В нашей ветбольнице работает современная лаборатория, в которой мы выполняем все виды анализов на высокоточном оборудовании и в короткие сроки.

Для перевозки биоматериала используется специальный транспорт и строго соблюдаются правила транспортировки, поэтому погрешность в результатах сводится к минимуму.

Биохимическое исследование крови

Если ветдоктор заподозрил у мыши заболевание желчного пузыря, печени, почек и других внутренних органов, а также скрытые воспалительные процессы или нехватку в организме важных микроэлементов, назначается это обследование.

В крови оценивают уровень билирубина, белка, эритроцитов, холестерина и других показателей. Их сверка с нормой помогает выявить отклонения и поставить диагноз.

У мышей кровь могут брать из:

  • височной вены,
  • ретроорбитального синуса,
  • подкожных вен конечности,
  • кончика хвоста после удаления,
  • литеральной хвостовой вены.

Забор крови у мыши может выполнить только ветдоктор, поэтому рекомендуем не ставить экспериментов над животным, а обратиться к профессионалам.

Клинический анализ крови

Еще одно базовое исследование, направленное на поиск в организме опасных болезней и воспалений.

Кровь подвергают проверке на уровень глюкозы, эритроцитов, холестерина, билирубина и многих других показателей.

Результаты сверяют с нормой, что позволяет ветдоктору найти воспаления и патологии и диагностировать заболевания большинства внутренних органов.

Биохимия необходима для назначения лекарственных препаратов и отслеживания эффективности используемого ранее лечения.

Брать кровь на биохимию у мышей можно из височной вены, ретроорбитального синуса, подкожных вен конечностей и других участков, но под силу это только опытному ветврачу.

Клинический анализ крови

Это важнейшее исследование, при котором в крови оценивают уровень лейкоцитов, тромбоцитов, нейтрофилов, СОЭ, гемоглобина и многих других важных показателей.

Возможно проведение общего или расширенного анализа, а также изучение конкретных параметров.

По результатам принимается решение о необходимости дополнительных обследований, а также выборе или изменении тактики лечения.

Забор крови у мышей – задача сложная, поэтому не стоит проводить эксперименты над грызуном, а лучше довериться профессионалу.

Клинический анализ мочи с микроскопией осадка

Анализ мочи назначают при патологиях мочеполовой системы, а также при подозрениях на скрытые заболевания и инфекции, развивающиеся без симптомов.

Обследование урины также помогает понять, как протекает болезнь, как действует выбранное лечение.

В первую очередь, мочу обследуют на уровень билирубина, глюкозы, белка и ряда других показателей.

Также производят оценку на наличие крови, бактерий, кристаллов и других включений, которые могут сообщить о наличии заболевания в организме.

Точный результат даст анализ только утренней мочи, привезенной в лабораторию не позже, чем через два часа после сбора.

Анализ кала

Это обследование назначают при подозрениях на болезни желудочно-кишечного тракта.

Также мыши нередко страдают от заболеваний желчного пузыря, печени, поджелудочной, от инфекционных и паразитарных недугов.

Результаты анализа помогут подтвердить или опровергнуть диагноз, подобрать лечение или скорректировать его.

Для обследования необходим кал, собранный утром в чистую емкость и доставленный в ветбольницу в этот же день.

Микроскопическая диагностика инфекционных заболеваний

Если у ветврача возникло подозрение на поражение организма мыши инфекцией, вызванной простейшими микроорганизмами.

С помощью этого метода удается обнаружить заболевание, установить вид микроорганизмов и их количество.

После подтверждения диагноза принимается решение о лечении животного теми или иными препаратами.

Материал, подходящий для исследования: мокрота, мазки со слизистых рта и носа, кровь, моча, кал.

Гистология и цитология

Это обследования, направленные на изучение тканей организма и поиск доброкачественных и злокачественных образований.

Специалист производит забор участка ткани и внимательно исследует его под микроскопом. Для более детального изучения выполняется обследование на клеточном уровне.

Гистология и цитология помогают установить характер онкологии, способность к метастазам и рецидивам.

Также изучают скапливающиеся в организме жидкости, берут на анализ ткани печени и легких. Забор материала может производиться специальной иглой или же хирургическим путем.

Мазки на кровепаразитов

Этот анализ необходим для диагностики болезней, вызванных паразитами, проникшими в кровь животного.

Особо опасным считается пироплазмоз, поэтому его важно обнаружить как можно быстрее и принять меры.

Кровь обследуют под микроскопом, и если мышь больна, паразиты будут обнаружены в эритроцитах.

Анализы животных на дому

Наша ветклиника предлагает воспользоваться услугой сбора анализов в домашних условиях.

Наш ветдоктор готов выехать по Москве и Подмосковью 24 часа в сутки, чтобы оказать квалифицированную помощь и взять материал для обследования.

Вы сэкономите свое время на дороге до клиники, а ваш любимец останется рядом с вами там, где ему все хорошо знакомо. Так он испытает меньший стресс, чем при посещении ветбольницы.

Сколько проводится исследование анализов

Результаты анализов сообщаются лечащему ветдоктору и хозяину в течение 1-2 суток.

Дополнительно проводятся экспресс-анализы, которые позволяют получить результат уже через 1-2 часа.

Это необходимо в случае тяжелых патологий, травм и болезней, лечение которых не требует отлагательств. 

Цены на услуги в нашей клиникеВ клинике и на дому
Выезд ратолога на домот 500
Клинический осмотр, постановка предварительного  диагноза, консультацияот 500
Консультация по телефонубесплатно
Терапияот 150
Хирургияот 150
Скорая помощь на дом (в течение часа)от 1000
Цены на услуги в нашей клиникеВ клинике и на дому
Подкожное введение лекарства грызунамот 150
Внутримышечное введение лекарства грызунамот 200
Внутривенное (в катетер, через иглу)от 200
Капельница для грызуновот 1000
Постановка внутривенного  катетераот 300
 Снятие внутривенного катетера 200
Зондовое питание грызуновот 300
Взятие проб кровиот 300
Новокаиновая блокадаот 200
Вправление защечного мешкаот 200
Стрижка 
Стрижка когтейот 300
Стрижка колтуновот 1000
Обработка ушных раковинот 300
Цены на услуги в нашей клиникеВ клинике и на дому
Хирургия 
Хирургия мочеполовых органов у грызунов: 
Кастрацияот 2000
Стерилизацияот 2500
Хирургические процедурыот 400
Хирургическая обработка ранот 300
Наложение кожно-мышечных швовот 200
Наложение бинтовой повязкиот 100
Наложение гипсовой повязкиот 1000
Снятие гипсовой повязкиот 300
Хирургия  инфекций кожи, мягких тканей и опухолей 
Вскрытие абсцессов, гематомот 400
Обработка гнойных ранот 700
Установка дренажаот 500
Промывание дренажа350
Лечение гематомы ушной раковиныот 1500
Унилатеральная мастэктомияот 4000
Регионарная мастэктомияот 5000
Удаление  новообразованийот 2000
Абдоминальная хирургия 
Родовспоможение у грызуновот 1000
Ранимация новорожденныхот 300
Кесарево сечениеот 3000
Пиометраот 1500
Цены на услуги в нашей клиникеВ клинике и на дому
Наркозот 500
Цены на услуги в нашей клиникеВ клинике и на дому
 Пластика век при завороте, выворотеот 2000
Экзентерация глазного яблокаот 3000
Цены на услуги в нашей клиникеВ клинике и на дому
Удаление резцовот 500
Подрезка и коррекция зубов у грызуновот 1500
Цены на услуги в нашей клиникеВ клинике и на дому
Анализ крови: 
Общеклинический анализ крови900
Цитология крови1000
Биохимический анализ по 1 выборочному показателю300
Биохимический анализ крови по 6 показателям1500
Биохимический анализ крови по 12 показателям2500
Дополнительные биохимические показатели на панкреатическая амилаза, ревматоидный фактор, с-реактивный белокот 300
Анализ мочи: 
Общеклинический анализ мочи400
Экспресс анализ мочи на глюкозу200
Экспресс анализ мочи300
Биохимия мочи 1 показатель100
Исследования кала 
Общий анализ кала500
Посев кала на патогенов1500
Анализ кала на дисбактериоз2000
Анализ кала на простейшие и яйца гельминтов500
Бактериология 
Бактериологический скрининг2000
Микробиологический скрининг2000
Полный микробиологический скрининг (без подтитровки)1500
Исследования кожного покрова 
Биопсия кожи1700
Мазок-отпечаток с кожи1000
Дерматофиты и эктопаразиты1000
Патоморфология1500
Гистология новообразований, кистозного содержимого2000
Цитология новообразований, кистозного содержимого1500
Цены на услуги в нашей клиникеВ клинике и на дому
Ветритуал 
Усыпление грызунов1000
Кремация грызунов1000
Индивидуальная кремация грызуновот 3500
Вскрытие грызунов2000-5000

Источник

  • Авторы
  • Резюме
  • Файлы
  • Ключевые слова
  • Литература

Ажикова А.К.

1

Журавлева Г.Ф.

2

1 ГБОУ ВПО «Астраханский Государственный медицинский университет»

2 ФГОУ ВПО «Астраханский государственный университет»

Впервые изучено влияние лекарственных форм различной консистенции на количественные изменения периферической крови крыс в условиях искусственной ожоговой травмы. Любой патологический процесс может отразиться на количественных и качественных особенностях состава циркулирующей крови. Этим и определяется огромное значение необходимости изучения крови в условиях гипертермии и выявления закономерностей изменений различных показателей. Термическая травма сопровождается развитием интоксикации. Кровь в первую очередь подвергается действию токсических веществ, возникших в очаге поражения. Исследование морфологических и биохимических показателей периферической крови заключалось в определении количества лейкоцитов, количества эритроцитов, лейкоцитарной формулы, уровня гемоглобина, перекисной резистентности эритроцитов. Полученные данные расширяют и углубляют представления о характере интоксикации организма в условиях стрессового воздействия различных факторов.

показатели периферической крови

кроветворные органы

ожоговые поражения кожи

термическое воздействие

гипертермия

1. Ажикова А. К. Использование пуповинной крови для восстановления кожи после термической травмы / А. К. Ажикова, М. В. Лазько // Естественные науки: Журнал фундаментальных и прикладных исследований. – 2008. – №.4. – С. 53-57.

2. Грушко М. П. Состояние периферической крови у карповых рыб в нерестовый период / М. П. Грушко, Н. Н. Федорова // Актуальные проблемы современной науки. – Технические науки: Труды 2-го Международного форума. – Самара, 2006. – С.23-25.

3. Земков Г. В. Характер и степень патологических изменений в крови и внутренних органах судака / Г. В. Земков, Г. Ф. Журавлева // Материалы VIII конф. по экологической физиологии и биохимии рыб. – Петрозаводск, 1992. – С. 40.

4. Лазько А. Е. Состояние мембран эритроцитов при воздействии серосодержащего газа / А. Е. Лазько, Р. И. Асфандияров, А. А. Резаев // Актуальные вопросы медицинской фармакологии. – 1993. – С.41-47.

5. Мамонтова Е. В. Влияние ALPHA-токоферола на степень перекисного гемолиза белых мышей в норме и при иммобилизационном стрессе / Е. В. Мамонтова // Современные проблемы науки и образования. – 2006. – № 3. – С. 27-28.

6. Островский В. К. Показатели крови и лейкоцитарного индекса интоксикации в оценке тяжести и определении прогноза при воспалительных, гнойных и гнойно-деструктивных заболеваниях / В. К. Островский, А. В. Мащенко, Д. В. Янголенко, С. В. Макаров // Клин. лаб. диагностика. – 2006. – № 6. – С. 50-53.

7. Покровский А. А. Методика определения перекисного гемолиза эритроцитов / А. А. Покровский, А. А. Абразцов // Вопросы питания. – М.: Наука, 1964. – № 6. – С.44.

8. Рожкова И. С. Влияние хронической интоксикации на свободнорадикальные процессы плазмы крови крыс / И. С. Рожкова, Д. Л. Теплый, Б. В. Фельдман // Научный руководитель. – 2015. – № 3(10). – С. 1-7.

9. Теплый Д. Л. Особенности морфологической картины сыворотки крови мышей разных возрастных групп при экспериментальном стрессе / Д. Л. Теплый, Н. А. Аюпова // Естественные науки: Журнал фундаментальных и прикладных исследований. – 2005. – №.10. – С. 47-50.

10. Ясенявская А. Л. Влияние антиоксидантов на уровень перекисного гемолиза эритроцитов старых крыс в норме и при иммобилизационном стрессе / А. Л. Ясенявская, Н. В. Кобзева // Современные наукоемкие технологии. – 2006. – № 2. – С. 69-70.

В медицинской биотехнологии постановка экспериментов при помощи моделирования патологических состояний, например ожогового повреждения кожи, имеет огромное значение для глубокого исследования крови и кроветворных органов [3]. Исходя из этого, необходимо тщательное и всестороннее изучение всех изменений, которые происходят в организме при этих воздействиях. Главным образом это относится к системам поддержания гомеостаза [2].

Ожоговые поражения кожи стали в современном мире одним из наиболее социально значимых и распространенных типов травматических повреждений у человека. Изучению вопроса реакции клеток крови на ожоги посвящен ряд исследований [1, 8].

Любое заболевание, патологический процесс, а также ряд физиологических сдвигов могут в той или иной степени отразиться на количественных и качественных особенностях состава циркулирующей крови [5]. Этим и определяется огромное значение необходимости изучения крови. Белые клетки крови, имея высокую реактивность, быстро включаются в адаптационные реакции. Они способны к неспецифическому реагированию в ответ на альтерирующие воздействия.

Термическая травма сопровождается развитием интоксикации. Кровь в первую очередь подвергается действию токсических веществ, возникших в очаге поражения [1].

Свой вклад в общее состояние системы организма вносят компоненты крови. Наиболее уязвимым объектом для действия продуктов свободнорадикального окисления липидов является стенка кровеносных сосудов, что обусловлено высоким уровнем кислорода в крови и низким уровнем его утилизации [9]. В условиях патологического процесса происходит поражение неклеточного компонента сосудистой стенки.

Цель исследования – изучение показателей периферической крови половозрелых крыс в норме и в условиях термического воздействия.

Материалы и методы. Объектом исследования явились 50 беспородных крыс-самцов 4-месячного возраста. Во время эксперимента регистрировали общее состояние и поведение животных. Самцы крыс были разделены на пять групп по типу воздействия:

I группа – животные, не подвергшиеся ожоговому воздействию (контрольная, 10 шт.);

II группа – животные, получившие ожоговое воздействие и не подвергшиеся терапии (10 шт.). Раны регенерировали естественным путем;

III группа – животные, получившие ожоговое воздействие и подвергшиеся терапии спреем «Д-Пантенол» (10 шт.);

IV группа – животные, получившие ожоговое воздействие и подвергшиеся терапии бальзамом мазевой формы «Спасатель» (10 шт.);

V группа – животные, получившие ожоговое воздействие и подвергшиеся терапии аппликациями настойки календулы (10 шт.).

Исследование морфологических и биохимических показателей периферической крови заключалось в определении количества лейкоцитов, количества эритроцитов, лейкоцитарной формулы, уровня гемоглобина, перекисной резистентности эритроцитов.

Уровень гемоглобина в образцах крови крыс определяли электрофотометрическим способом на гемоглобинометре APEL Hemoglobinmeter HG-202. Мазки фиксировали и окрашивали по Романовскому – Гимзе. Идентификация форменных элементов крови проводилась согласно методике Н. Т. Ивановой [4]. Количество эритроцитов крови подсчитывали по стандартной методике в камере Горяева. Количество лейкоцитов считали по мазкам крови крыс.

Для оценки уровня свободнорадикального окисления и выраженности в связи с этим липолитических процессов в крови проводили измерение перекисной резистентности эритроцитов. Перекисный гемолиз эритроцитов является чувствительным показателем, отражающим про– и антиоксидантный баланс организма [6].

Для определения перекисного гемолиза эритроцитов использовали модификацию методов определения степени перекисного гемолиза эритроцитов (ПГЭ) А. А. Покровского и А. А. Абразцова [7], которую предложили А. Е. Лазько, Р. И. Асфандияров и А. А. Резаев [4].

Результаты исследования и их обсуждение. Анализ гематологических исследований экспериментальных животных показал, что наиболее высокий уровень гемоглобина периферической крови наблюдался у крыс, лечившихся бальзамом «Спасатель» и спреем «Д-пантенол», что наглядно отображено в таблице 1. В группе крыс, лечившихся настойкой календулы, данный показатель незначительно отличался от значений у обожженных животных, не получавших лечения.

Таблица 1

Гематологические показатели через 3 суток после ожоговой травмы

Тип воздействия

Эритроциты

(шт./мкл.)

Гемоглобин

(г/л)

1 -Контроль

7,8х106

27,7

2-Ожог

6,5 х106*

25,6*

3-Ожог+аппликации мазью «Д-пантенол»

8,2х106 *

29,2 *

4-Ожог+аппликации бальзамом «Спасатель»

8,3х106*

28,3*

5-Ожог+аппликации настойкой календулы

6,8х106*

25,7*

Примечание: * – Р<0,05 по сравнению с контролем.

Изменение уровня гемоглобина в результате опыта отмечено в таблице 1. Высокий уровень гемоглобина наблюдался у крыс, лечившихся Д-пантенолом. Средний показатель уровня гемоглобина отмечен у крыс, леченных бальзамом «Спасатель». В экспериментальной группе с настойкой календулы он незначительно и статистически недостоверно отличался от значений у животных 3 группы.

Выявлено, что термический ожог кожи вызвал уменьшение количества эритроцитов периферической крови крыс. Установлено, что при лечении ожогов этот показатель несколько увеличивался, например, при терапии бальзамом «Спасатель» и спреем «Д-пантенол».

Перекисный гемолиз эритроцитов является чувствительным показателем, отражающим про- и антиоксидантный баланс организма [10].

По данным табл. 2 показано, что не леченный термический ожог межлопаточной области спины крыс способствует наиболее полному перекисному гемолизу эритроцитов крови крыс (степень гемолиза, в среднем, 7 %, p<0,001). Лечение ожогов кожи бальзамом «Спасатель» вызывает средний гемолиз (степень гемолиза в среднем 3,94 %, р<0,05), при терапии ожоговых травм межлопаточной области спины крыс спреем Д-пантенолом наблюдался частичный гемолиз (степень гемолиза в среднем и 3,62 %, Р<0,05).

Таблица 2

Перекисная резистентность эритроцитов самцов крыс (% гемолизированных эритроцитов)

Группа

Количество

животных

М+m

1 -Контроль

10

3,82+0,121*

2 -Ожог

10

6,83+0,469 *** ###

3 -Ожог+аппликации мазью «Д-пантенол»

10

3,62+0,174***

###

4-Ожог+аппликации бальзамом «Спасатель»

10

3,94+0,081*

5-Ожог+аппликации настойкой календулы

10

4,94+0,081*

Примечание: в сравнении с контрольными животными: *р<0,05; **p<0,01; ***p<0,001; в сравнении с группой 2-Ожог: #р<0,05; ##p<0,01; ###p<0,001.

Анализ данных по определению перекисного гемолиза эритроцитов самцов белых крыс показал, что устойчивость эритроцитов к перекисной провокации значительно повышалась в условиях лечения ожогов кожи крыс аппликациями бальзамом «Спасатель». Воздействие аппликациями мазью «Д-пантенол» привели к повышению устойчивости эритроцитов к перекисной провокации и приблизили показатели перекисного гемолиза эритроцитов к контролю. Термический ожог без лечения резко снизил устойчивость эритроцитов к перекисной провокации. Аппликации настойкой календулы незначительно повысил устойчивость эритроцитов к гемолизу (см. табл. 2).

Установлено, что термические ожоги существенно влияют и на общее число лейкоцитов, что проявлялось выраженной лейкопенией во все сроки наблюдения. В табл. 3 представлена некоторая волнообразность лейкопении. Так, на 3-и сутки количество лейкоцитов составляло 1,8±1,4 × 109, на 7-е – 2,5±1,4 × 109, на 14-е – 0,85±1,4 × 109, на 30-е – 2,4±1,4 × 109. Учитывая, что в контрольной серии уровень лейкоцитов составлял 10,2±1,4 × 109, что соответствует и литературным данным [9], отмечено значительное снижение числа защитных клеток крови.

Таблица 3

Содержание лейкоцитов в периферической крови крыс

Экспериментальные группы

Количество животных, n

Количество лейкоцитов × 109 на 3 сутки эксперимента

Количество лейкоцитов × 109 на 7 сутки эксперимента

Количество лейкоцитов × 109 на 10 сутки эксперимента

1-Контроль

10

3,4 ± 0,1

3,2 ± 0,1

3,0 ± 0,1

2-Ожог

10

3,8 ± 0,2 *

3,3 ± 0,3 *

2,9 ± 0,2 *

3-Ожог+аппликации мазью «Д-пантенол»

10

3,2 ± 0,3 *

3,1 ± 0,3 *

2,9 ± 0,3 *

4-Ожог+аппликации бальзамом «Спасатель»

10

3,1 ± 0,3*

3,1 ± 0,3*

3,2 ± 0,4*

5-Ожог+аппликации настойкой календулы

10

2,8 ± 0,2 *

3,1 ± 0,3 *

2,9 ± 0,2 *

Примечание: * – p<0,05 – достоверность различий между группами животных по сравнению с контролем.

Наблюдалось изменение общего количества лейкоцитов после термического воздействия между экспериментальными группами и контролем (см. табл. 3). В ходе экспериментов было выявлено, что у животных, получавших терапию Д-пантенолом, происходило незначительное уменьшение общего количества лейкоцитов в сравнении с контролем. У животных, получавших лечение настойкой календулы, количество лейкоцитов достоверно уменьшилось в сравнении с контрольной группой на 22 % (р<0,05).

Изучение лейкоцитарной формулы дало не менее интересные результаты. В табл. 4 отражены результаты исследования влияния ожоговой травмы на показатели лейкоцитарной формулы периферической крови подопытных крыс. В контрольной серии в формуле преобладали лимфоциты до 55–60 %, нейтрофилы составляли 40 %. При исследовании получено, что термический ожог приводил к достоверному и выраженному увеличению процентного числа лимфоцитов и нейтрофилов. Так, на 3-и сутки лимфоциты составляли 67,4 %.

Таблица 4

Изменение показателей лейкоцитарной формулы на 3-и сутки эксперимента

Экспериментальные группы

Нейтрофилы, M±m, %

Лимфоциты, M±m, %

Эозинофилы M±m, %

Моноциты M±m, %

1-Контроль

40,1±3,52

55,6±3,18

2,1±0,71

6,2±2,00

2-Ожог

27,1± 2,97*

67,4±2,61*

3,1± 0,80*

2,4± 0,34*

3-Ожог+аппликации мазью «Д-пантенол»

37,2± 2,91#

60,2±2,94#

2,7± 0,49#

5,9± 0,61#

4-Ожог+аппликации бальзамом «Спасатель»

41,0± 2,99#

58,6±5,22 #

2,9± 0,31#

6,4± 2,32#

5-Ожог+аппликации настойкой календулы

41,0± 2,99 #

64,6±5,22 #

2,7± 0,31#

2,9± 2,32#

Примечание: р<0,05, * – в сравнении с контролем,

# – в сравнении с группой получивших ожог без лечения.

Данные эксперимента моделирования термического ожога межлопаточной области спины белых крыс свидетельствовали о достоверном колебании количества нейтрофилов у животных, получавших лечение аппликациями спрея, в сравнении с контрольной группой и группой, не получавших лечение (рис. 1).

Нормы крови у мышей

Рис. 1. Количество нейтрофилов (M±m, %) в разных опытных группах

Отмечено, что показатели количества нейтрофилов, по сравнению с контролем, чуть ниже в группе, лечившихся спреем «Д-пантенол», и незначительно выше в группе, лечившихся бальзамом «Спасатель». На рис. 2 видно, что отсутствие терапии ожога у 2 группы крыс отразилось на большем количественном содержании лимфоцитов крови.

Нормы крови у мышей

Рис. 2. Количество лимфоцитов (M±m, %) в разных опытных группах

У группы крыс, лечившихся бальзамом «Спасатель», количество лимфоцитов увеличилось. При сравнении крыс, лечившихся спреем «Д-пантенол», с контрольной группой наблюдалось снижение количества лимфоцитов, а у крыс, лечившихся настойкой календулы, количество лимфоцитов практически не отличалось от 2 группы.

При ожоге наблюдалось изменение показателей эозинофилов: увеличение этого показателя в группе 2 (ожог без терапии), в сравнении с группами крыс, получавших лечение (р<0,05). У животных, лечившихся спреем, количество эозинофилов повысилось на 22 %, по сравнению с контролем, при терапии настойкой календулы оно понизилось, что не достоверно (рис. 3).

Нормы крови у мышей

Рис. 3. Количество эозинофилов (M±m, %) в разных опытных группах

Как видно из круговой диаграммы на рис. 4, термическое воздействие без лечения приводило к снижению количества моноцитов, терапия аппликациями бальзамом «Спасатель» и спреем «Д-пантенол» стимулировало незначительное увеличение количества моноцитов в крови, по сравнению с контрольной группой подопытных животных (рис. 4).

Нормы крови у мышей

Рис. 4. Количество моноцитов (M±m, %) в разных опытных группах

Заключение

Исследование таких гематологических показателей, как количество эритроцитов, лейкоцитов, уровень гемоглобина и состояние перекисной резистентности эритроцитов, свидетельствует о значительном поражении системы крови под воздействием местного воздействия термического фактора. Наиболее результативными оказались эксперименты терапии ожогов крыс аппликациями спрея «Д-пантенол» и бальзама «Спасатель».

Таким образом, применение в эксперименте лекарственных средств для лечения ожогов (спрей Д-пантенол, бальзам «Спасатель») способствует существенному ингибированию свободнорадикального окисления, к повышению прочности клеточных мембран компонентов крови.

Библиографическая ссылка

Ажикова А.К., Журавлева Г.Ф. ИССЛЕДОВАНИЕ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРЫС В НОРМЕ И В УСЛОВИЯХ ТЕРМИЧЕСКОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ // Современные проблемы науки и образования. – 2016. – № 2.;
URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=24350 (дата обращения: 14.08.2020).

Предлагаем вашему вниманию журналы, издающиеся в издательстве «Академия Естествознания»

(Высокий импакт-фактор РИНЦ, тематика журналов охватывает все научные направления)

Источник