Нормы крови у телят
| Показатель | Возраст | ||
| 1-5 дней | 10-15 дней | 1 мес | 3 мес |
Кровь
рН 7,38-7,41 7,35-7,41 7,38-7,45 7,40-7,42
Гематокрит,% 35-37 36-37 37-38 38-40
Эритроциты,1012 /л 7,4-8,4 6,4-6,8 8,2-8,6 7,8-8,0
Лейкоциты,109/л 7,1-12,1 9,3-12,5 8,2-8,6 9,3-10,0
Гемоглобин, г/л 105-109 90-126 109-113 112-128
Глюкоза, ммоль/л 4,5-5,0 4,2-4,4 – 3,2-3,6
Сыворотка (плазма) крови
Общий белок, г/л 56,9-60,5 56,5-59,1 61-63 62-66
Резервная щелочность, 54-56 52-54 50-54 53-55
об.%СО2
Мочевина, ммоль/л 2,4-3,6 3,6-3,7 – –
Билирубин, мкмоль/л 4,7-8,2 2,6-3,4 – –
Кальций общий,
ммоль/л 2,7-3,2 2,6-2,7 – 2,7-3,0
мг% 10,8-12,8 – – –
Фосфор неорганический
ммоль/л 4,8-7,4 4,5-6,8 – 5,88-6,0
мг% 1,5-2,3 1,4-2,2 – 1,9-2,0
Магний, ммоль/л 1,3-1,4 1,3-1,4 1,2-1,3 1,2-1,3
Витамин. А, мкмоль/л 1,4 1,4 1,4 1,4
Нормативы показателей крови ягнят
| Показатель | Возраст | ||
| 1 день | 14 дней | 1 мес | 4-6 мес |
Кровь
Эритроциты,1012 /л 9-10,2 6,5-8,7 8,4-9,8 9,2-12,2
Лейкоциты,109 /л 4-7 5-6,5 5,2-8,0 6,1-10,4
Гематокрит,% 35-37 36-37 3,7-38 38-40
Гемоглобин, г/л 100-120 94-113 92-122
Глюкоза, ммоль/л 5,5-5,8 4,9-5,2 4,1-4,7 2,9-3,4
Сыворотка крови
Общий белок, г/л 46-54 64-59 60-62 62-71
Резервная щелочность
(плазма) об.%СО2 49-56 50-55 50-56 46-60
Биохимические показатели молозива и молока здоровых коров
| Показатель | Молоко | Молозиво | |||
| 1-го удоя | 1-го дня | 2-го дня | 3-го дня | 4-го дня | 5-го дня |
Кислотность,0 Т 16-19 40,0 33,0 27,3 23,1 21,6
Кетоновые тела, 4-8 2-6 – – – – 6-8
мг%
Каротин, мкг% 8-28 110-400 – – – – –
Магний, мг% 11-15 25-33 – – – – 15-17
Мочевина, мг% 20-40 15-20 – – – – 18-24
Кальций 125- 260- 235- 183- 181- 176- 168-
общий, мг% -130 -180 -152 -147 -141 -140 -90,0
Белок общий,% 2,7-5,0 22,5 14,8 9,4 5,8 4,0 3,9
Ретинол,мкг% 13-3,5 150-580 – – – – –
Сахар
молочный,% 4.0-5,6 – 3,0 3,6 3,9 4,1 4,1
Токоферол, мкг% 8-10 – – – – – –
Фосфор неоргани- 60- 152- 160- 128- 109- 97- –
ческий, мг% -65 -96 -90 -80 -70 -69
рН 6,3-6,5 – – – – – –
Натрий, мг% 36- 63 – – – – – –
Калий, мг% 140-180 – – – – – –
Нитраты,мг/кг Не более 10
ЛИТЕРАТУРА
1. Авдонин И.С. Агрохимия. М.: Изд-во МГУ, 2002.
2. Агрохимические методы исследования почв. – М.: Наука, 2005. – 656 с.
3. Алексеев Ю.В. Тяжелые металлы в почвах и растениях. – СПб.: Агропромиздат, 2007. – 142 с.
4. Анспок П.И. Микроудобрения. Справочник. М.: Агропромиздат, 2000.
5. Арзуманян Е.А. Животноводство. – М: Агропромиздат, 2007.
6. Аринушкина Е.В. Руководство по химическому анализу почв. – М.: Изд-во МГУ, 2007. – 487 с.
7. Артюшин Н.Л. Удобрения в интенсивных технологиях возделывания сельскохозяйственных культур. М.: Агропромиздат, 2011.
8. Безуглова О.С. Удобрения и стимуляторы роста. Ростов-на-Дону: Феникс, 2000.
9. Беспамятнов Г.П., Кротов Ю.А. Предельно допустимые концентрации химических веществ в окружающей среде. – СПб.: Химия, 2005. – 528 с.
10. Большаков В.А., Краснова Н.М., Борисочкина Т.И., Сорокин С.Е., Граковский В.Г. Агротехногенное загрязнение почвенного покрова тяжелыми металлами: источники, масштабы, рекультивация. – М., 2003. – 90 с.
11. Васильев В.А.: Справочник по органическим удобрениям. – М.: Росагропромиздат, 2008.
12. Давыдова С.Л. О токсичности ионов металлов. – М.: Знание, 2001. – 32 с.
13. Кабата-Пендиас А., Кабата-Пендиас Х. Микроэлементы в почвах и растениях. – М.: Мир, 2009. – 439 с.
14. Кальницкий Б.Д. Минеральные вещества в кормлении животных. – СПб.: Агропромиздат., 2005. – 207 с.
15. Лебедев Н.И. Использование микродобавок для повышения продуктивности жвачных животных. – СПб.: Агропромиздат, 2000. – 96 с.
16. Левичева Н.Б., Иванчикова И.Г. Практикум по неорганической химии. Калининград, 2007.
17. Мельников Н.Н. Пестициды: Химия, технология и применение. М.: Химия, 2012.
18. Минеев В.Г. Экологические проблемы агрохимии. – М.:Химия, 2010 – 283 с.
19. Минеев В.Г., Ремпе Е.Х. Агрохимия, биология и экология почвы. – М.: Росагропромиздат, 2012.
20. Муравин Э.А.: Агрохимия. – М.: КолосС, 2003.
21. Орлов Д.С., Малинина М.С., Мотузова Г.В. и др. Химическое загрязнение почв и их охрана. – М.: Агропромиздат, 2001. – 303 с.
22. Орлова А.Н.: От азота до урожая. – М.: Просвещение, 2010.
23. Петербургский А.В. Основы агрохимии. М.: Просвещение, 2013.
24. Пискунов А.С. Методы агрохимических исследований. – М.: КолосС, 2004.
25. Постников А.В. Химизация сельского хозяйства. М.: Росагропромиздат, 2008.
26. Русин Г.Г.: Физико-химические методы анализа в агрохимии. – М.: Агропромиздат, 2009.
27. Смирнов П.М.: Агрохимия. – М.: Агропромиздат, 2001.
28. Сударкина А.А., Евсеева И.П., Орлова А.Н. Химия в сельском хозяйстве. М.: Просвещение, 2014.
29. Федюшкин Б.Ф.: Минеральные удобрения с микроэлементами. – Л.: Химия, 2010.
30. Школьник М.Я. Микроэлементы в жизни растений. – СПб.: Наука, 2000. – 324 с.
Не нашли, что искали? Воспользуйтесь поиском:
| / Обзоры и публикации / Ветеринария | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
Успех передачи иммунной защиты теленку (оценка качества и количества первой выпойки молозивом) можно определить по анализу крови на общий уровень протеина или количество иммуноглобулинов (IgG).
Важно учитывать, что данная оценка эффективна в первые 2-3 дня после рождения.
а) Методика определения с помощью рефрактометра (простая и не требует специализированных лабораторий, может быть использована в любом хозяйстве)
- Отобрать кровь у теленка
- Отстоять кровь и получить сыворотку
С помощью прибора рефрактометр определить содержание протеина в сыворотке.
Рефрактометр, прибор для измерения количества света, проходящего через жидкость. По мере прохождения света через жидкость, он преломляется молекулами, содержащимися в ней.
В сыворотке крови такими молекулами являются, прежде всего, молекулы белков.
Более высокие показания прибора означают большее преломление и, следовательно, большее содержание белка в пробе крови.
Иммуноглобулины составляют лишь часть общего белка крови, но находятся в прямой пропорции с ним у телят в возрасте до 3 дней.
Определение общего белка у телят более старшего возраста менее ценно, т. к. в этом возрасте уже достаточно большая доля белков в сыворотке крови – это белки, потребленные с кормом.
Оценочная шкала общего белка в сыворотке крови:
- 5,5 г/ дл и выше – телята получили качественное молозиво в достаточном количестве в нужное время, низкая вероятность заболевания;
- 5,0-5,4 г/дл – телята получили недостаточно молозива или молозиво низкого качества или выпойка была не своевременно, телята на грани риска заболевания;
- Ниже 5,0 г/ дл – телята не получили молозиво нужного качества, количества и в нужное время, высокий уровень риска.
При использовании заменителей молозива на основе сыворотки крови КРС показание рефрактометра – 4,75 г/ дл
б) Определение уровня иммуноглобулинов с помощью специальных тестовых наборов. Можно использовать до 5 дневного возраста телят.
В данном методе содержание иммуноглобулинов измеряют напрямую как в сыворотке, так и в цельной крови.
Оценочная шкала:
- IgG > 10 мг/мл – норма;
- IgG < 10 мг/мл – низкий уровень, у телят с такими показателями риск заболеваемости и смертности в два с лишним раза больше, чем у телят с нормальным уровнем IgG.
В данном методе измеряют истинный уровень иммуноглобулинов, поэтому использование заменителей молозива на основе сыворотки крови на их показания не влияют.
Концентрация иммуноглобулинов в молозиве может варьироваться от 20 до 100 мг/мл.
Качественное молозиво должно содержать не менее 50 мг/мл.
Некоторые факторы, влияющие на уровень иммуноглобулинов (IgG) в молозиве:
– объем молозива при первой дойке. Если корова дает более 5-6 литров молозива, то концентрация иммуноглобулинов в нем снижается. Желательно, в первое доение после отела выдаивать не более 6 литров, независимо от продуктивности коровы;
– состояние иммунной системы коровы: зависит от воздействия на нее уровня кормления, содержания, заболеваний и вакцинаций;
– продолжительность сухостойного периода: норма 6-8 недель, при сокращении сухостойного периода уровень IgG в молозиве снижается;
– возраст коровы, чем моложе корова, тем ниже уровень IgG в молозиве и к меньшему количеству болезнетворных бактерий. Оптимально, для выпойки телят использовать молозиво от коров 3-го отела и старше;
– кормление коров в сухостойный период. Дефицит протеина и энергии, использование плесневых кормов и кормов с содержанием масляной кислоты в сухостойный период снижает качество молозива;
– подтекание молозива из вымени или сдаивание до отела: и то, и другое снижает уровень иммуноглобулинов, т. к. в первых литрах самая высокая концентрация IgG;
– время от отела до первой дойки. Уровень иммуноглобулинов в молозиве после отела быстро снижается. Выдоить корову следует как можно быстрее;
– погода (тепловой стресс). Высокая температура снижает уровень IgG.
Любой организм в соответствии с генотипом даже при наличии экстремальных условий обладает способностью сохранять постоянство гомеостаза. Очевидно, поэтому гематологические, биохимические и другие показатели различных систем отличаются стабильностью, подвергаясь под воздействием внешней среда лишь модификационной изменчивости, проявляющейся в незначительных отклонениях от нормы. На гематологические, биохимические и другие показатели существенное влияние оказывает не только физиологическое состояние животного (возраст, беременность, продуктивность), но и условия кормления, содержания, эксплуатации, а также среда обитания. Вместе с тем картина крови сохраняет свои индивидуальные и видовые особенности.
Наиболее научно обоснованным и присущим современному этапу развития биологической пауки, в том числе медицины и ветеринарии, является математический метод установления нормативов, основанный па теории вероятности с использованием исходных материалов, охватывающих результаты исследований больших групп разного возраста, пола, продуктивности здоровых животных, находящихся в различных климатических зонах.
При изучении особенностей вариационного распределения гематологических показателей было установлено, что для большинства из ниx характерно распределение, близкое к нормативному. Лишь в распределении эозинофилов, палочкоядерных нейтрофилов, ретикулоцитов и СОЭ имеется некоторая асимметрия. Для гематологических показателей, как уже принято в биологических исследованиях, нормативы должны иметь уровень достоверности не менее 0,05, т. е. норма — 95% здоровых животных и только в 5% случаев возможны отклонения, причины которых не известны. К сожалению, эти положения при установлении нормативов выполнены не всегда, так как были получены намного раньше, чем была разработана теория вероятности. Поэтому в предложенных многочисленными авторами нормативах морфологического состава кропи для ратных видов животных представлены только средине значения и их экстремальные отклонения (табл. 2, 3).
Определенные трудности вызывает вопрос о необходимости создания отдельных нормативов в зависимости от географических зон, различающихся природно-экономическими условиями. По-видимому, только в местностях, резко отличающихся, например, по высоте над уровнем моря, средней годовой температуре, разводимому типу скота, целесообразно иметь свои нормативы, что очень важно для изучения краевой патологии. Вместе с тем независимо от условий для объективной оценки результатов исследований необходимо знать особенности нормальной картины крови определенного вида животного.
Лошадь. Данный вид животного имеет гранулоцитарный профиль крови, когда нейтрофилы преобладают над остальными клетками. Специфическая зернистость в эозинофилах является наиболее крупной из аналогичных клеток всех животных. Эритроциты образуют цепочки, как и у человека, так называемые монетные столбики. СОЭ выражена и довольно высокая. Следует отметить, что лошади резко отличаются по показателям красной крови в зависимости от типа. Рысистые лошади (горячие) имеют более высокое содержание в крови эритроцитов и уровень гемоглобина, чем рабочие (холодные). В норме у них в крови присутствуют в незначительных количествах ретикулоциты, число которых увеличивается при различных анемиях.
Крупный рогатый скот. До 1 мес после рождения телята имеют нейтрофильный профиль крови при повышенном содержании палочкоядерных форм нейтрофилов, а в последующее время у крупного рогатого скота преобладают лимфоциты над гранулоцитами. СОЭ не выражена, поэтому обычно методически не исследуется. Среди эритроцитов отмечается анизоцитоз. Ретикулоциты и полихроматофилы в норме и даже при патологии в крови не появляются.
Овца. Данный вид животных имеет наиболее выраженный лимфоцитарный профиль крови с самого рождения. Зрелые нейтрофилы по сравнению с крупным рогатым скотом более сегментированы, число которых составляет обычно 3— 4 фрагмента. Количество эритроцитов по сравнению с крупным рогатым скотом несколько выше, но они намного меньше. Ретикулоциты отсутствуют. В норме анизоцитоз, пойкилоцитоз, СОЭ не выражена.
Коза. У данного вида наиболее высокие показатели красной крови, которые завысят от мест их обитания. Высокогорные козы имеют более высокое содержание в крови эритроцитов и уровень гемоглобина. Эритроциты очень мелкие, ретикулоциты отсутствуют. СОЭ также не выражена.
Свинья. Количество лейкоцитов в крови свиней несколько выше, чем у других видов сельскохозяйственных животных. Лимфоциты являются преобладающими клетками белой крови. Среди нейтрофилов число палочкоядерных форм клеток повышено. Ретикулоциты и полихроматофилы постоянно присутствуют как в норме, так при патологии.
Собака. Как и лошадь, собака имеет нейтрофильный профиль крови. В норме в небольших количествах даже у взрослых особей, встречаются полихроматофилы и ретикулоциты, а иногда эритроциты с тельцами Жоли и даже нормобласты. У данного вида выражены, как и у лошади, породные различия в составе красной крови. Гончие собаки имеют более высокое содержание эритроцитов и уровень гемоглобина.
Кошка. Количество лейкоцитов у данного вида животного колеблется в широких пределах (от 10 до 20 тыс. клеток в 1 мкл крови). Соотношение гранулоцитов и лимфоцитов почти равное. В отличие от других видов млекопитающих у кошек гранулы в эозинофилах расположены густо и часто имеют палочковидную форму неодинаковой величины.
Кролик. Нейтрофилы у кролика содержат очень крупную зернистость напоминающую по размерам и окраске зернистость эозино-филов, и поэтому эти клетки были названы псевдоэозинофилами. В картине красной крови, особенно в молодом возрасте, много полихроматофилов и реттисулоцитов.
Птицы. Количество лейкоцитов у всех видов птиц по сравнению с млекопитающими животными в несколько раз выше и колеблется в широких пределах (от 20 до 40 тыс. в 1 мкл крови). Профиль крови обычно лимфоцитарный. Зернистость в нейтрофилах, которая, как и у кролика, называется псевдоэозинофилами, в эозинофилах довольно сходная и представлена многочисленными эозинофильными гранулами различной величины и формы. Однако в эозинофилах гранулы обычно круглые и реже палочковидные, у псевдоэозинофилов, наоборот, гранулы, как правило, палочковидные с заострением на концах. Эритроциты у всех птиц содержат ядро и имеют эллипсовидную форму. Нередко встречаются полихромные эритроциты и клетки с витальной зернистостью. Тромбоциты также содержат ядро, т. е. являются настоящими клетками, а не пластинками, как у млекопитающих. Тромбоцита у птиц — самые мелкие клетки крови, приближающиеся по размеру к малым лимфоцитам.
Причины различий в морфологическом составе крови у различных видов животных не вполне ясны, но, вероятно, обусловлены особенностями обмена веществ. В практическом отношении важно значь, что животные с различным профилем крови (лимфоцитарный, нейтрофильный) несколько иначе реагируют на воздействие внутренних и внешних факторов. В частности, у лошадей, собак реакция па воспалительные процессы довольно сильная и выражается обычно в резком лейкоцитозе в результате значительного увеличения количества нейтрофилов со сдвигом «влево», вплоть до развития лейкемоидной реакции миелоидного типа (например, при хрониосепсисе). У крупного рогатого скота, наоборот, воспалительные процессы, даже хрониосепсис, не вызывают в крови значительных изменений, хотя реакция также однотипна, т. е. лейкоцитоз с нейтрофилезом и регенеративным сдвигом.
Следует также отметить, что у животных с лимфоцитарным профилем крови чаще наблюдаются лейкозы лимфоидной формы, а у животных с нейтрофильной картиной кропи преимущественно встречаются миелолейкозы. У кур, эритроциты которых имеют ядра, кроме того, встречаются эритробластозы, последние пока не описаны у других сельскохозяйственных животных.
- Функциональные методы выделения и идентификации Т- и В-лимфоцитов крови
- Определение фагоцитарной активности лейкоцитов
- Определение некоторых физико-химических показателей крови
- Методы лейкоконцентрации
- Подсчет лейкоцитарной формулы и других цитограмм
- Приготовление цитологических препаратов, методы их фиксации и окраски
- Пункция кроветворных органов (техника и инструментарий)
- Получение проб крови и отдельных их компонентов
- Клиническая иммуногематология
- Система свертывания крови и противосвертывающие механизмы