Нормы морфологических показателей крови коров
Любой организм в соответствии с генотипом даже при наличии экстремальных условий обладает способностью сохранять постоянство гомеостаза. Очевидно, поэтому гематологические, биохимические и другие показатели различных систем отличаются стабильностью, подвергаясь под воздействием внешней среда лишь модификационной изменчивости, проявляющейся в незначительных отклонениях от нормы. На гематологические, биохимические и другие показатели существенное влияние оказывает не только физиологическое состояние животного (возраст, беременность, продуктивность), но и условия кормления, содержания, эксплуатации, а также среда обитания. Вместе с тем картина крови сохраняет свои индивидуальные и видовые особенности.
Наиболее научно обоснованным и присущим современному этапу развития биологической пауки, в том числе медицины и ветеринарии, является математический метод установления нормативов, основанный па теории вероятности с использованием исходных материалов, охватывающих результаты исследований больших групп разного возраста, пола, продуктивности здоровых животных, находящихся в различных климатических зонах.
При изучении особенностей вариационного распределения гематологических показателей было установлено, что для большинства из ниx характерно распределение, близкое к нормативному. Лишь в распределении эозинофилов, палочкоядерных нейтрофилов, ретикулоцитов и СОЭ имеется некоторая асимметрия. Для гематологических показателей, как уже принято в биологических исследованиях, нормативы должны иметь уровень достоверности не менее 0,05, т. е. норма — 95% здоровых животных и только в 5% случаев возможны отклонения, причины которых не известны. К сожалению, эти положения при установлении нормативов выполнены не всегда, так как были получены намного раньше, чем была разработана теория вероятности. Поэтому в предложенных многочисленными авторами нормативах морфологического состава кропи для ратных видов животных представлены только средине значения и их экстремальные отклонения (табл. 2, 3).
Определенные трудности вызывает вопрос о необходимости создания отдельных нормативов в зависимости от географических зон, различающихся природно-экономическими условиями. По-видимому, только в местностях, резко отличающихся, например, по высоте над уровнем моря, средней годовой температуре, разводимому типу скота, целесообразно иметь свои нормативы, что очень важно для изучения краевой патологии. Вместе с тем независимо от условий для объективной оценки результатов исследований необходимо знать особенности нормальной картины крови определенного вида животного.
Лошадь. Данный вид животного имеет гранулоцитарный профиль крови, когда нейтрофилы преобладают над остальными клетками. Специфическая зернистость в эозинофилах является наиболее крупной из аналогичных клеток всех животных. Эритроциты образуют цепочки, как и у человека, так называемые монетные столбики. СОЭ выражена и довольно высокая. Следует отметить, что лошади резко отличаются по показателям красной крови в зависимости от типа. Рысистые лошади (горячие) имеют более высокое содержание в крови эритроцитов и уровень гемоглобина, чем рабочие (холодные). В норме у них в крови присутствуют в незначительных количествах ретикулоциты, число которых увеличивается при различных анемиях.
Крупный рогатый скот. До 1 мес после рождения телята имеют нейтрофильный профиль крови при повышенном содержании палочкоядерных форм нейтрофилов, а в последующее время у крупного рогатого скота преобладают лимфоциты над гранулоцитами. СОЭ не выражена, поэтому обычно методически не исследуется. Среди эритроцитов отмечается анизоцитоз. Ретикулоциты и полихроматофилы в норме и даже при патологии в крови не появляются.
Овца. Данный вид животных имеет наиболее выраженный лимфоцитарный профиль крови с самого рождения. Зрелые нейтрофилы по сравнению с крупным рогатым скотом более сегментированы, число которых составляет обычно 3— 4 фрагмента. Количество эритроцитов по сравнению с крупным рогатым скотом несколько выше, но они намного меньше. Ретикулоциты отсутствуют. В норме анизоцитоз, пойкилоцитоз, СОЭ не выражена.
Коза. У данного вида наиболее высокие показатели красной крови, которые завысят от мест их обитания. Высокогорные козы имеют более высокое содержание в крови эритроцитов и уровень гемоглобина. Эритроциты очень мелкие, ретикулоциты отсутствуют. СОЭ также не выражена.
Свинья. Количество лейкоцитов в крови свиней несколько выше, чем у других видов сельскохозяйственных животных. Лимфоциты являются преобладающими клетками белой крови. Среди нейтрофилов число палочкоядерных форм клеток повышено. Ретикулоциты и полихроматофилы постоянно присутствуют как в норме, так при патологии.
Собака. Как и лошадь, собака имеет нейтрофильный профиль крови. В норме в небольших количествах даже у взрослых особей, встречаются полихроматофилы и ретикулоциты, а иногда эритроциты с тельцами Жоли и даже нормобласты. У данного вида выражены, как и у лошади, породные различия в составе красной крови. Гончие собаки имеют более высокое содержание эритроцитов и уровень гемоглобина.
Кошка. Количество лейкоцитов у данного вида животного колеблется в широких пределах (от 10 до 20 тыс. клеток в 1 мкл крови). Соотношение гранулоцитов и лимфоцитов почти равное. В отличие от других видов млекопитающих у кошек гранулы в эозинофилах расположены густо и часто имеют палочковидную форму неодинаковой величины.
Кролик. Нейтрофилы у кролика содержат очень крупную зернистость напоминающую по размерам и окраске зернистость эозино-филов, и поэтому эти клетки были названы псевдоэозинофилами. В картине красной крови, особенно в молодом возрасте, много полихроматофилов и реттисулоцитов.
Птицы. Количество лейкоцитов у всех видов птиц по сравнению с млекопитающими животными в несколько раз выше и колеблется в широких пределах (от 20 до 40 тыс. в 1 мкл крови). Профиль крови обычно лимфоцитарный. Зернистость в нейтрофилах, которая, как и у кролика, называется псевдоэозинофилами, в эозинофилах довольно сходная и представлена многочисленными эозинофильными гранулами различной величины и формы. Однако в эозинофилах гранулы обычно круглые и реже палочковидные, у псевдоэозинофилов, наоборот, гранулы, как правило, палочковидные с заострением на концах. Эритроциты у всех птиц содержат ядро и имеют эллипсовидную форму. Нередко встречаются полихромные эритроциты и клетки с витальной зернистостью. Тромбоциты также содержат ядро, т. е. являются настоящими клетками, а не пластинками, как у млекопитающих. Тромбоцита у птиц — самые мелкие клетки крови, приближающиеся по размеру к малым лимфоцитам.
Причины различий в морфологическом составе крови у различных видов животных не вполне ясны, но, вероятно, обусловлены особенностями обмена веществ. В практическом отношении важно значь, что животные с различным профилем крови (лимфоцитарный, нейтрофильный) несколько иначе реагируют на воздействие внутренних и внешних факторов. В частности, у лошадей, собак реакция па воспалительные процессы довольно сильная и выражается обычно в резком лейкоцитозе в результате значительного увеличения количества нейтрофилов со сдвигом «влево», вплоть до развития лейкемоидной реакции миелоидного типа (например, при хрониосепсисе). У крупного рогатого скота, наоборот, воспалительные процессы, даже хрониосепсис, не вызывают в крови значительных изменений, хотя реакция также однотипна, т. е. лейкоцитоз с нейтрофилезом и регенеративным сдвигом.
Следует также отметить, что у животных с лимфоцитарным профилем крови чаще наблюдаются лейкозы лимфоидной формы, а у животных с нейтрофильной картиной кропи преимущественно встречаются миелолейкозы. У кур, эритроциты которых имеют ядра, кроме того, встречаются эритробластозы, последние пока не описаны у других сельскохозяйственных животных.
- Функциональные методы выделения и идентификации Т- и В-лимфоцитов крови
- Определение фагоцитарной активности лейкоцитов
- Определение некоторых физико-химических показателей крови
- Методы лейкоконцентрации
- Подсчет лейкоцитарной формулы и других цитограмм
- Приготовление цитологических препаратов, методы их фиксации и окраски
- Пункция кроветворных органов (техника и инструментарий)
- Получение проб крови и отдельных их компонентов
- Клиническая иммуногематология
- Система свертывания крови и противосвертывающие механизмы
Исследование морфологического состава крови.
В клинической практике исследование морфологического состава крови, имеет диагностическое значение, особенно при лейкозе и анемиях.
При исследовании необходимо иметь в виду, что состав и свойства периферической крови претерпевают определенные сдвиги под влиянием ряда факторов.
В частности на морфологический состав крови оказывает влияние возраст животного, состояние мышечного напряжения (вызывает кратковременное повышение эритроцитов и лейкоцитов при относительной лимфоцитолении и эозинолении).
Сезон года – увеличение солнечного облучения, увеличивает количество лейкоцитов, эритроцитов и гемоглобина. В конце лета у КРС количество лейкоцитов больше, чем в конце зимы.
Оказывает влияние порода — молочные породы КРС и мясные группы имеют более высокие показатели количества эритроцитов, лейкоцитов, или породы мясомолочные. Большинство исследований указывают, что высокопродуктивные животные имеют более высокие морфологические показатели крови, чем низкопродуктивные.
Изменяется состав крови под действием лактации, условий со-держания, кормления. Установлено, что при скармливании КРС гибрида свеклы и турнепса приводило к снижению гемоглобина, увеличению лейкоцитов, лимфоцитозу и эозинофилии.
У животных горных местностей в крови количество гемоглобина и эритроцитов выше, чем у животных низменностей.
У новорожденных выше количество эритроцитов, тромбоцитов, лейкоцитов, и редко их количество снижается через 2 недели после рождения, в первые дни жизни больше нейтрофилов, мало эозинофилов, наблюдается повышенный процент палочкоядерных.
С возрастом же в крови количество лейкоцитов и лимфоцитов уменьшается, а нейтрофилов повышается.
Подсчет количества форменных элементов, крови. Подсчет эрит-роцитов производят с помощью микроскопа и счетной камеры или в спецприборах – счетчиках ИКМ-1, ИКМ-2, УКМ-1, ЦКМ—2 и др.
Уменьшение количества эритроцитов – эритроцитоления – может быть при анемиях, недостаточном кормлении (недостаток белков, витаминов B12 , кобальта, железа, меди) при интоксикациях, отравлениях гемолитическими ядами, инвазионных болезнях, обильных кровопотерях, злокачественных опухолях, лейкозе.
Увеличение количества эритроцитов – эритроцитоз – наблюдается при потере организмом воды, при непроходимости кишечника, хро-нической эмфиземе, и альвеолярной эмфмземе.
Подсчет количества лейкоцитов. Лейкоциты неоднородны как морфологически (гранулоциты — базофилы, эозинофилы, нейтрофилы; агранулоциты — лимфоциты, моноциты), так и по функциональному значению, трофическое, транспортное и т. д.
Базофилы — способны к слабому фагоцитозу, принимают участие в предотвращении свертывания крови и лимфы в очаге воспаления, играют роль во взаимодействии антиген-антитело, в жировом обмене, при аллергических реакциях происходит дегрануляция этик клеток с высвобождением гистамина.
Эозинофилы — способны активно фагоцитировать, нейтрализуют избыток гистамина при аллергии, переносят продукты распада белка, обладающих антигенными свойствами, предупреждая местное скопление антигенов, участвуют в тканевой регенерации и окислительных процессах.
Нейтрофилы – самостоятельно подвижны, хорошо фагоцитируют (переходят к участку повреждения), активные ферментообразователи, участвуют в белковом обмене, образовании и переносе антител, стимулирует процессы регенерации.
Продолжительность жизни гранулоцитов 9-13 дней из них на костно-мозговые стадии – 5-6 дней, внутрисосудистый период от нескольких часов до 2 дней, а остальные дни – это тканевой, функциональный период – 2-5 дней, в тканях же они и погибают. Местами гибели являются – ЖКТ, легкие, селезенка, печень и другие органы.
Моноциты – амебовидно подвижны, фагоцитарно активны, участвуют в продуцировании антител.
Лимфоциты- состоят из Т-лимфоцитов и В-лимфоцитов – это вездесущие клетки, они участвуют в образовании гуморального (В-лимфоциты) и тканевого (Т-лимфоциты) иммунитета, продуцируют сывороточные гамма-глобулины, обладают фагоцитозом, содержат ряд ферментов (липаза, амилаза, лизоцим и др.), фиксируют токсины, участвуют в кишечном пищеварении, захватывая и транспортируя липиды, подают сигналы красному костному мозгу о том, какие виды клеток и в каком количестве продуцировать для нужд организма. Т-лимфоциты – долгожители (до 200-300 дней) и составляют 80 % всех лимфоцитов, 20 % – это В-лимфоциты.
Подсчет количества лейкоцитов в крови проводится с помощью счетных камер Горяева или кондуктометрических счетчиков частиц.
Увеличение количества лейкоцитов в крови – лейкоцитоз – может быть физиологией при беременности, у новорожденных, после приема корма (максимум достигается лейкоцитоза через 2-4 часов) у животных с многокамерным желудком его практически нет, после тяжелой физической нагрузки.
Медикаментозный лейкоз – возникает на введение вакцин, сывороток, адреналина, кортикостероидов, кортикотропина, жаропонижающих, эфирных масел и др.
Патологические лейкозы – при острых инфекционных заболеваниях, лихорадочно-воспалительных процессах, лейкозах, уремии, кровопаразитарных болезнях, обширных ожогах, после больших кровопотерь. Это увеличение лейкоцитов.
Уменьшение лейкоцитов – лейкоцитопения – при вирусных болезнях, паратифе, стахиоботрикозе, истощение защитных сил организма, лучевой болезни.
Подсчет количества тромбоцитов – важно в связи с тем, что в них содержится больше десятка факторов принимающих участие в свертывании крови, выполняют защитные функции в организме – прилипая к бактериям, паразитам, захватывая токсины и микробы и транспортируют их в селезенку.
Продолжительность жизни тромбоцитов – 5-8 дней, погибают они главным образом в селезенке.
Подсчет количества тромбоцитов производится в счетной камере Горяева или косвенными методами по окрашиванию мазков.
Уменьшение количества тромбоцитов – тромбоцитопения – встречается при большинстве инфекционных болезней, геморрагическом диатезе, анемии, А-гиповитаминозе, стахиоботриотоксикозе, лучевой болезни, пироплазмозе, воспалении кишечника, в клинической стадии лейкозов.
Увеличение тромбоцитов – тромбоцитоз – может быть при воспалении легких, плеврите, ожогах, саркоме, асфиксии, травмах, с размножением мышечных тканей, в стадии выздоровления при инфекционных болезнях, после хирургических операций, миелолейкозе.
Лейкограмма периферической крови – это процентное соотноше-ние между отдельными видами лейкоцитов, записанное в определенном порядке.
Определение лейкограмм производится по окрашенным мазкам под имерсионной системой микроскопа путем дифференцированного подсчета 100 (или 200) лейкоцитов с помощью четырехпольного или трехпольного методов. Для регистрации каждого вида лейкоцитов, обнаруженных при исследовании мазка крови, используют одиннадцатиклавишиые счетчики.
Изменения лейкограммы у здоровых животных в циркули-рующей крови основная масса клеток представлена зрелыми формами, а у больных не зрелыми.
Исследование костномозгового пунктата проводят в том случае, когда данных морфологических недостаточно, а данные исследования дают возможность сделать вывод о гемопоэзе, т. н. в костном мозге происходит развитие всех форменных элементов крови.
Исследование селезенки. Селезенка принимает участие в лимфо – поэзе, кроворазрушении, иммунологических и других защитных реакций организма, является важным депо крови (в ней может задерживаться до 15% крови всего организма), участвует в синтезе нуклеиновый кислот, холестерина, в обмене железа.
Для исследования селезенки используют методы пальпации, перкуссии и пункции органа.
У животных селезенка расположена в глубине левого подреберья. Наружной поверхностью она прилегает к грудной клетке, отделяясь от нее диафрагмой, а внутренней поверхностью лежит у жвачных животных – на рубце, а у других видов – на желудке.
МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ ДОЙНЫХ КОРОВ ПРИ РАЗНЫХ УРОВНЯХ ХЛОРИДА ХРОМА В РАЦИОНАХ
В. А. КОКОРЕВ, Н. И. ГИБАЛКИНА, А. Б. МЕЖЕВОВ
ФГБОУ ВПО «Мордовский государственный университет им. Н. П. Огарева» г. Саранск, Республика Мордовия, Россия, 430005 А. М. ГУРЬЯНОВ
ГНУ Мордовский НИИСХ г. Саранск, Республика Мордовия, Россия, 430904
(Поступила в редакцию 03.02.2014)
Введение. В организме животных кровь выполняет транспортную роль (транспорт кислорода к тканям и углекислого газа от тканей к легким, транспорт питательных веществ и удаление из тканей конечных продуктов обмена); регуляторную (поддерживает постоянство рН и осмотического давления, доставляет к тканям гормоны); защитную (ее антитела и лейкоциты, связывая возбудителей болезней и продукты их жизнедеятельности, предохраняют организм от кровопотерь при повреждении сосудов). Кровообращение, процессы кроветворения и химический состав крови регулируются центральной нервной системой, главным образом высшими ее отделами [2, 3, 9].
Данные биохимического состава крови являются одним из критериев оценки полноценности кормления, а также позволяют выявить особенности обмена веществ у животных в зависимости от их наследственных свойств. В числе показателей полноценности кормления также содержание в крови гемоглобина и эритроцитов. Чем больше гемоглобина в крови, тем больше она может поглотить и разнести по телу кислорода и тем интенсивнее будет происходить обмен веществ.
Исследования многих ученых свидетельствуют о том, что морфологический и биохимический состав крови изменяется в зависимости от возраста животных, физиологического состояния организма, условий кормления и содержания, а также молочной продуктивности [2, 5, 12, 13].
Исходя из огромного значения крови в обмене и других важнейших процессов жизнедеятельности организма животного, можно утверждать, что состав крови влияет на продуктивность животных [10].
Все перемены в организме так или иначе отражаются на морфобио-химической картине крови. Значит, состав крови может дать информацию о происходящих в организме процессах в зависимости от его наследственных свойств, под действием факторов среды и физиологического состояния. Поэтому существенное значение для характеристики интерьера животных имеет картина крови, так как она играет первостепенную роль в обеспечении процессов, протекающих в организме, и является основным поставщиком составных компонентов молока.
Цель работы – изучить влияние различных уровней хрома в рационах на морфологические и биохимические показатели крови дойных коров первых трех лактаций.
Материал и методика исследований. С целью изучения влияния разных уровней хрома в рационах дойных коров первых трех лактаций на морфологические и биохимические показатели крови были проведены два научно-хозяйственных опыта методом аналогов были отобраны и сформированы 3 группы коров первой, второй и третьей лактации, по 8 голов в каждой. Согласно детализированным нормам РАСХН (2003) все животные в зависимости от живой массы, физиологического состояния, продуктивности и возраста получали основной рацион с учетом химического состава местных кормов и отличались только концентрацией в нем хрома.
Дозировки хрома в рационах животных во время научно-хозяйственных опытов устанавливали с учетом содержания элемента в кормах, рассчитывали на живую массу согласно рекомендуемым нормам [11, 4] для молодняка крупного рогатого скота черно-пестрой породы, которые составили в среднем 5,2 мг на 100 кг живой массы.
Гематологические показатели исследовались на одних и тех же животных из каждой группы. В крови определяли следующие показатели: содержание лейкоцитов, эритроцитов, гемоглобин, альбумины, глобулины, кальций, фосфор, щелочной резерв и сахар.
По данным анализа химического состава используемых кормов, в соответствии с требованиями детализированных норм кормления сначала выявили дефицит питательных веществ, макро и микроэлементов, витаминов в кормах, а затем в рационах дойных коров. Недостаток микроэлементов в рационах восполняли дачей соответствующего количества минеральных солей в виде смеси с концентратами. Дефицит же хрома в рационах восполняли введением хлористого хрома, который представляет собой порошок темно-зеленого цвета в виде кристаллов, хорошо растворимый в воде и спирте (ГОСТ 4473 – 78).
Рационы для животных всех опытных групп по энергетической питательности и содержанию основных питательных веществ были одинаковыми и отвечали зоотехническим нормам, но отличались только уровнем хрома (табл. 1).
Т а б л и ц а 1. Схема научно-хозяйственных опытов
Дефицит микроэлементов в рационах, с учетом их содержания в используемых кормах, восполняли дачей соответствующего количества минеральных солей. Минеральные вещества во все периоды давали в смеси с концентрированными кормами.
Результаты исследований и их обсуждение. В результате проведенных исследований было установлено, что гематологические показатели коров подопытных групп находились в пределах физиологических норм, что подтверждает хорошее состояние их здоровья.
Использование различных уровней хрома в рационах коров положительно отразилось на гематологических показателях крови (табл. 2).
Т а б л и ц а 2. Биохимический и морфологический состав крови коров
Результаты наших исследований свидетельствуют об изменении морфологического состава крови коров первой группы в лучшую сторону. На морфологический состав крови влияет в значительной мере срок лактации и молочная продуктивность животных. В период раздоя концентрация в крови гемоглобина и эритроцитов была наименьшей, с течением лактации она несколько возросла. В организме коров, получавших рационы с оптимальным уровнем хрома по сравнению с животными второй и третьей групп более интенсивно происходили окислительно -восстановительные процессы.
Так, у коров первой опытной группы первой лактации, по сравнению с аналогами второй и третьей группы, в крови увеличилось количество эритроцитов на 14,8 и 5,0 % (Р<0,05), во второй лактации соответственно на 14,4 % и 4,9 % (Р<0,01), в третьей – 13,3 и 2,7 %, (Р<0,01) и концентрация гемоглобина в первой лактации на 1,8 и 0,02 %, во второй лактации – на 1,8 и 0,02 % и в третьей – на 1,7 и 0,1 % (Р<0,05). Следовательно, повышение содержания эритроцитов и гемоглобина в крови коров опытных групп можно рассматривать как улучшение ионообменных и окислительно-восстановительных процессов.
В группах с пониженным содержанием хрома в рационе отмечается повышение лейкоцитов по сравнению с аналогами из первой и третьей групп. По первой лактации увеличение составило 5,1 и 1,7 % (Р<0,05), по второй лактации – на 5,0 и 1,7 % (Р<0,05) и по третьей соответственно – на 4,6 и 0,8 % (Р<0,01).
Большое клиническое значение для суждения о состоянии азотистого обмена в организме животных имеют исследования по определению азотистых компонентов крови белковой и небелковой природы. Содержание общего белка в крови или ее плазме и сыворотке характеризует общее количество азотсодержащих соединений.
В обменных процессах животных ведущую роль играют белки сыворотки крови. Они функционально связаны с развитием у них основных хозяйственно ценных признаков, быстро обновляются и переходят в другие ткани [16]. Они участвуют в процессах питания и роста, транспортировке продуктов метаболизма, синтезе ферментов, поддержании осмотического давления, иммунобиологических реакциях и других важных функциях организма.
Так, в сыворотке крови у первой опытной группы установлено повышение общего белка по первой лактации на 3,7 и 1,9 % (Р<0,05), по второй – на 3,7 и 1,9 % (Р<0,05) и в третьей соответственно на 4,3 (Р<0,01) и 1,7 % (Р<0,05) за счет повышения а, в и у глобулиновых фракций (табл. 3).
Т а б л и ц а 3. Содержание белка и белковых фракций в сыворотке крови коров
Роль альбуминов в организме животных весьма разнообразна. Они участвуют в транспортировании углеводов, жирных кислот, витаминов, неорганических ионов, в регуляции рН, водного и минерального обмена. Установлено, что если нарушено обеспечение ткани белками, то снижается уровень белков в крови, но не всех, а лишь альбуминов, следовательно, уменьшение концентрации альбуминов является показателем недостаточности или неполноценности белка в рационе [2].
Анализируя данные наших опытов, видим, что в крови животных подопытных групп содержание альбуминов было в пределах физиологических норм (Р<0,01).
Значительные изменения присущи глобулиновым фракциям белков. Глобулины группы а и в выполняют функции транспортировки к клеткам нерастворимых в воде липидов, витаминов А, Д, Е, К. Они связывают более 2/3 холестерина крови. Глобулины группы у содержат специфические белки – антитела, которые способны нейтрализовать токсины, связывать чужеродные белки, образовывать осадки с антигенами и т. д. [7].
Результаты исследований показывают, что глобулины в общем белке сыворотки крови всех групп животных находились в пределах физиологической нормы (Р<0,05).
Различный уровень изучаемого элемента в рационах определенным образом отразился и на минеральном составе крови. Потребление коровами рационов с дополнительным содержанием хрома особенно четко проявилось на содержании кальция, фосфора и самого элемента в крови.
К числу элементов, постоянно входящих в состав органов и тканей животных и имеющих биологическое значение, относятся кальций, фосфор и др. Минеральные вещества имеются в опорных тканях, биологически активных веществах и соединениях, богатых энергией. Значимость кальция и фосфора определяется их влиянием на ферментную активность и защитные функции живого организма.
Концентрация кальция и неорганического фосфора в сыворотке крови является отражением состояния фосфорно-кальциевого питания животных и дает представление о состоянии у них минерального обмена.
Кальций – преимущественно внеклеточный элемент. Он один из важнейших компонентов системы, регулирующей проницаемость мембран. Ионы кальция способствуют взаимодействию актина и миозина, сокращению мышечных волокон. Этот эффект осуществляется с участием магния и АТФ. Ион кальция активирует процесс свертывания крови [1, 6].
Все виды обмена в организме неразрывно связаны с превращением фосфорной кислоты. Фосфор входит в структуру нуклеиновых кислот, благодаря фосфорилированию осуществляется кишечная адсорбция, гликолиз, прямое окисление углеводов, транспорт липидов, обмен аминокислот и т. д. Макроэргические фосфорные соединения, среди которых центральное место занимает АТФ, являются универсальным донатором и аккумулятором энергии. Органический фосфор связан с белками и липидами [9, 14].
Уровень молочной продуктивности, образование и поддержание структуры костной ткани у коров во многом зависят от состояния фосфорнокальциевого обмена. Для его характеристики обычно исследуют содержание в сыворотке крови кальция и фосфора. Согласно нашим данным, содержание этих элементов в различные физиологические периоды было неодинаковым, изменение их количества в сыворотке крови происходило волнообразно. В начале лактации концентрация кальция и фосфора была наименьшей, к середине лактации она заметно возросла, а в конце лактации вновь снижалась (табл. 4).
Т а б л и ц а 4. Содержание минеральных веществ в крови коров
Результаты наших исследований показали, что наименьшее содержание кальция и фосфора в крови отмечалось у животных второй группы, где использовался дефицитный рацион по хрому. Этот факт отражает различный уровень обеспеченности организма коров этими минеральными веществами, уровнем расхода кальция на синтез молока.
Установленный нами уровень хрома в рационе животных первой группы способствовал повышению концентрации кальция в сыворотке крови у коров первой лактации на 6,34 и 3,73 % (Р<0,05), второй – на 5,49 % (Р<0,05) и 4,02 % и третьей – на 8,60 и 3,22 %, а также фосфора соответственно на 11,82 и 6,99 % (Р<0,05); 5,02 и 1,67 % (Р<0,01); 6,45 % (Р<0,001) и 2,15 % (Р<0,05) по сравнению с животными из второй и третьей группы.
При сопоставлении данных выявлено, что скармливание оптимального уровня хрома животным первой группы повышает концентрацию этого элемента в крови коров первой лактации на 14,28 и 3,57 %, второй – на 10,00 % и 3,33 % и третьей – на 10,00 и 6,66 %.
Заключение. Таким образом, анализируя гематологические и биохимические показатели крови у коров, можно сделать вывод, что обменные процессы в организме коров, получавших оптимальный уровень хрома, протекали интенсивнее по сравнению с животными, получавших рационы с избыточным и дефицитным содержанием хрома.
ЛИТЕРАТУРА
1. А ф о н с к и й, С. И. Биохимия животных / С. И. Афонский. – М.: Высшая школа, 1970. – 613 с.
2. В а с и л ь е в а, Е. А. Клиническая биохимия сельскохозяйственных животных: 2-е изд. / Е. А. Васильева. – М.: Россельхозиздат, 1982. – 254 с.
3. Г е о р г и е в с к и й, В. И. Физиология сельскохозяйственных животных / В. И. Георгиевский. – М.: Агропромиздат, 1990. – 511 с.
4. Г и б а л к и н а, Н. И. Потребность бычков в хроме при сенажном типе кормления: автореф. дис. … канд. с.-х. наук / Н. И. Гибалкина. – Саранск, 1998. – 25 с.
5. К о н д р а х и н, И. П. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии / И. П. Кондрахин, Н. В. Курилов, А. Г. Малахов. – М.: Агропромиздат, 1985. – 287 с.
6. К о н о н с к и й, А. И. Биохимия животных / А. И. Кононский. – М.: Колос, 1992. -С. 228-229.
7. К о р о б о в, А. П. Морфологические и биохимические показатели крови при использовании в рационах ремонтных телок сенажа в упаковке / А. П. Коробов, С. П. Москаленко // Вестник Саратовского аграрного университета им. Н. И. Вавилова. – 2005. -№ 4. – С. 12-14.
8. К у д р я в ц е в, А. А. Клиническая гематология животных / А. А. Кудрявцев, Л. А. Кудрявцева. – М.: Колос, 1974. – 399 с.
9. К у з н е ц о в, С. Г. Биохимические критерии полноценности кормления животных / С. Г. Кузнецов, Т. С. Кузнецова, А. С. Кузнецов // Ветеринария. – 2008. – № 4. -С. 3-8.
10. М а л ю г и н, С. В. Потребность ремонтных телок в хроме при сенажном типе кормления: дис. … канд. с.-х. наук / С. В. Малюгин. – Саранск, 1996. – 123 с.
11. С т о я н о в с к и й, С. В. Обмен кальция и фосфора у высокопродуктивных коров при разном уровне сахаропротеинового отношения / С. В. Стояновский, Ф. Ю. Пал-фий, С. Н. Лесив // Доклады ВАСХНИЛ. – 1984. – № 8. – С. 23-24.
12. Т а р а н о в, М. Т. Изучение сдвигов обмена веществ у животных / М. Т. Таранов // Животноводство. – 1983. – № 9. – С. 49-50.
13. Т к а ч е н к о, Т. Е. Связь биохимических показателей крови с молочной продуктивностью коров / Т. Е. Ткаченко // Зоотехния. – 2003. – № 7. – С. 17-20.
14. Ф е д а е в, А. Н. Теоретическое и практическое обоснование использования хрома в кормлении молодняка крупного рогатого скота / А. Н. Федаев, В. А. Кокорев, Н. И. Гибалкина. – Саранск: Мордов. кн. изд-во, 2003. – 224 с.