Осмотическая резистентность эритроцитов при постгеморрагической анемии

Постгеморрагическая анемия

Постгеморрагическая анемия – комплекс клинических и гематологических изменений, возникающий вследствие острой или хронической кровопотери. Постгеморрагическая анемия характеризуется бледностью, одышкой, потемнением в глазах, головокружением, гипотермией, артериальной гипотонией; в тяжелых случаях – заторможенностью, нитевидным пульсом, шоком, потерей сознания. Постгеморрагическую анемию диагностируют по данным клинической картины и общего анализа крови; для установления источника кровотечения проводятся инструментальные исследования. При развитии данного состояния необходимо устранение источника кровопотери, проведение трансфузионной и симптоматической терапии.

Общие сведения

Постгеморрагическая анемия – гипогемоглобинемия, развивающаяся вследствие геморрагического синдрома и сопровождающаяся ощутимым снижением объема циркулирующей крови (ОЦК). Постгеморрагическая анемия протекает с эритропенией, но часто без уменьшения концентрации гемоглобина (Hb). В норме уровень общего Hb и объем циркулирующих эритроцитов крови составляет соответственно: у мужчин – не ниже 130 г/л и 29-30 мл/кг веса, у женщин – не ниже 120 г/л и 22-23 мл/кг. Постгеморрагическая анемия может осложнять течение самых различных патологический состояний в хирургии, гематологии, гинекологии, гастроэнтерологии, кардиологии и др. Постгеморрагическая анемия может носить острый или хронический характер. Хроническая форма является вариантом железодефицитной анемии, так как механизм развития и симптомы патологии обусловлены усиливающимся дефицитом железа.

Постгеморрагическая анемия

Причины постгеморрагической анемии

Непосредственной причиной постгеморрагической анемии выступает острая или хроническая потеря крови, возникшая вследствие наружного или внутреннего кровотечения. Острая постгеморрагическая анемия возникает при быстрых, массивных кровопотерях, вызванных обычно механическим повреждением стенок крупных кровеносных сосудов или полостей сердца при различных травмах и хирургических операциях, разрывом стенок сердечных камер в зоне инфаркта, разрывом аневризмы аорты и ветвей легочной артерии, разрывом селезенки, разрывом фаллопиевой трубы при внематочной беременности.

Острая постгеморрагическая анемия характерна для обильных маточных кровотечений (менорагий, метрорагий), может сопровождать течение язвы желудка и 12-перстной кишки. У новорожденных постгеморрагическая анемия может быть вызвана плацентарным кровотечением, родовой травмой.

Хроническая постгеморрагическая анемия обусловлена продолжительными, часто возникающими потерями небольших объемов крови при желудочно-кишечных, геморроидальных, почечных, носовых кровотечениях, нарушениях механизмов свертывания крови (ДВС-синдроме, гемофилии). Опухолевые процессы (рак желудка, рак толстой кишки), протекающие с разрушением тканей и органов, проводят к развитию внутреннего кровотечения и постгеморрагической анемии. Гипогемоглобинемия может быть связана с повышением проницаемости стенок капилляров при лейкозах, лучевой болезни, инфекционно-септических процессах, недостаточности витамина C.

Патогенез постгеморрагической анемии

Основными факторами развития постгеморрагической анемии выступают явления сосудистой недостаточности, гиповолемия с уменьшением общего объема плазмы и циркулирующих форменных элементов, в частности, эритроцитов, осуществляющих транспорт кислорода. Этот процесс сопровождается снижением артериального давления, кровенаполнения внутренних органов и тканей, гипоксемией, гипоксией и ишемией, развитием шока.

Степень выраженности защитно-приспособительных реакций организма определяется объемом, скоростью и источником кровотечения. В раннюю рефлекторно-сосудистую фазу компенсации кровопотери (первые сутки) благодаря возбуждению симпатико-адреналовой системы наблюдается вазоконстрикция и усиление сопротивления периферических сосудов, стабилизация гемодинамики за счет централизации кровообращения с первоочередным кровоснабжением головного мозга и сердца, уменьшение возврата крови к сердцу и сердечного выброса. Концентрация эритроцитов, Hb и гематокрит пока близки к норме («скрытая» анемия).

Вторая гидремическая фаза компенсации (2-3 сутки) сопровождается аутогемодилюцией – поступлением в кровеносное русло тканевой жидкости и восполнением объема плазмы. Усиление секреции катехоламинов и альдостерона надпочечниками, вазопрессина – гипоталамусом способствует стабильности уровня электролитов в плазме крови. Происходит прогрессирующее снижение показателей эритроцитов и Hb (общего и в единице объема), гематокрита; значение цветового показателя в норме (постгеморрагическая нормохромная анемия).

В третью, костномозговую фазу компенсации (4-5 сутки) из-за недостатка железа анемия становится гипохромной, усиливается образование эритропоэтина почками с активацией ретикулоэндотелиальной системы, эритропоэза костного мозга, очагов экстрамедуллярного кроветворения. В красном костном мозге наблюдается гиперплазия эритроидного ростка и увеличение общего числа нормоцитов, в периферической крови – значительное повышение количества молодых форм эритроцитов (ретикулоцитов) и лейкоцитов. Уровни Hb, эритроцитов и гематокрит понижены. Нормализация уровня эритроцитов и Hb при отсутствии дальнейшей кровопотери происходит через 2-3 недели. При массивной или длительной кровопотере постгеморрагическая анемия приобретает гипорегенеративный характер, при истощении адаптационных систем организма развивается шок.

Симптомы постгеморрагической анемии

Клинические признаки постгеморрагической анемии однотипны вне зависимости от причины кровопотери, определяются ее объемом и длительностью.

В первые сутки после острой кровопотери у пациентов отмечается резкая слабость, бледный оттенок кожи и слизистых, одышка, потемнение и мелькание мушек в глазах, головокружение, шум в ушах, пересыхание во рту, снижение температуры тела (особенно, конечностей), холодный пот. Пульс становится частым и слабым, появляется артериальная гипотония. Следствием геморрагического синдрома является малокровие внутренних органов, жировая дистрофия миокарда, печени, ЦНС и других органов. Дети, особенно новорожденные и 1-го года жизни, кровопотерю переносят намного тяжелее, чем взрослые пациенты.

Постгеморрагическая анемия при массивной и быстрой кровопотере сопровождается геморрагическим коллапсом, резким падением артериального давления, нитевидным аритмичным пульсом, адинамией и заторможенностью, учащенным поверхностным дыханием с возможным развитием рвоты, судорог, потерей сознания. Если давление падает до критического уровня, вызывая острое нарушение кровоснабжения и гипоксию органов и систем, смерть наступает от паралича дыхательного центра и остановки сердца.

Медленно развивающаяся постгеморрагическая анемия характеризуется менее выраженными проявлениями, так как успевает частично компенсироваться за счет адаптационных механизмов.

Постгеморрагическая анемия

Диагностика постгеморрагической анемии

Диагностика постгеморрагической анемии проводится по данным клинической картины, лабораторных и инструментальных исследований (общего и биохимического анализов крови и мочи, ЭКГ, УЗ-диагностики, пункции костного мозга, трепанобиопсии). При осмотре пациента с острой постгеморрагической анемией обращает внимание гипотония, частое дыхание, слабый аритмичный пульс, тахикардия, приглушенность сердечных тонов, небольшой систолический шум на верхушке сердца.

В крови – абсолютное снижение эритроцитарной массы; при продолжающейся кровопотере наблюдается прогрессирующее равномерное падение содержания Hb и эритроцитов. При умеренной кровопотере гематологические признаки постгеморрагической анемии обнаруживается только на 2-4 сутки. Обязателен контроль диуреза, уровня тромбоцитов, электролитов и азотистых продуктов в крови, АД и ОЦК.

При острой постгеморрагической анемии нет необходимости в исследовании костного мозга, его проводят при трудно диагностируемых кровопотерях. В образцах костномозговой пункции признаками анемии являются повышение активности красного костного мозга, в препаратах трепанобиопсии – замещение жировой ткани костного мозга красным кроветворным мозгом.

При диагностике внутренних кровотечений показателен синдром острого малокровия и лабораторные данные. В селезенке, печени, лимфоузлах выявляются очаги экстрамедуллярного кроветворения, указывающие на повышенную нагрузку на гемопоэтическую систему; в крови – транзиторное понижение уровня железа, небольшое увеличение АлТ.

Для выявления и устранения источника кровопотери больные нуждаются в консультациях гематолога, хирурга, гинеколога, гастроэнтеролога и других специалистов; проведении УЗИ органов брюшной полости и малого таза, ФГДС и пр. ЭКГ при постгеморрагической анемии может демонстрировать снижение амплитуды Т-зубца в стандартном и грудном отведении.

Лечение и прогноз постгеморрагической анемии

Первостепенным в лечении постгеморрагической анемии является установление источника кровотечения и его немедленная ликвидация за счет перевязки и ушивания сосудов, резекции и ушивания поврежденных органов и тканей, повышения свертываемости крови и т. д.

Для восстановления ОЦК и снижения степени гемодинамических нарушений по наблюдением трансфузиолога проводится неотложное переливание консервированной крови, кровезаменителей, плазмы и плазмозаменителей. При незначительном, но продолжительном кровотечении трансфузия цельной крови или плазмы показана в небольших гемостатических дозах. При значительной потере ОЦК трансфузии должны выполняться в дозах, превышающих кровопотерю на 20-30%. Тяжелая постгеморрагическая анемия лечится переливаниями больших доз крови («трансплантация крови»). В период коллапса гемотрансфузии дополняют гипертоническими кровозамещающими растворами.

После восстановления ОЦК проводится коррекция качественного состава крови – восполнение ее компонентов: эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов. При большой одномоментной кровопотере и остановившемся кровотечении необходимы массивные дозы эритроцитарной массы (> 500 мл). Об эффективности гемотрансфузий судят по повышению АД, гематологическим сдвигам.

Также необходимо введение белковых и электролитных растворов (альбумина, физ. раствора, глюкозы), восстанавливающих водно-солевой баланс. В лечении постгеморрагической анемии используются препараты железа, витамины группы B. Назначается симптоматическая терапия, направленная на нормализацию функциональных нарушений со стороны сердечно-сосудистой и дыхательной систем, печени, почек и др.

Прогноз постгеморрагической анемии зависит от длительности и объема кровотечения. Резкая потеря 1/4 ОЦК приводит к острой анемии и состоянию гиповолемического шока, а потеря 1/2 ОЦК является несовместимой с жизнью. Постгеморрагическая анемия при медленной потере даже значительных объемов крови не столь опасна, поскольку может компенсироваться.

Источник

Осмотическая резистентность эритроцитов

Осмотическая резистентность эритроцитов — показатель устойчивости эритроцитов к осмотическому давлению. Стойкость ККТ определяется только путем диагностических мероприятий. Превышение или понижение нормы будет свидетельствовать о развитии определенного патологического процесса, а потому показатель следует всегда контролировать.

Осмотическая резистентность эритроцитов имеет свои минимальные и максимальные значения:

максимум — воздействие гипотонического раствора натрия хлорида, когда в течение трех часов происходит гемолиз совершенно всех клеток;
минимум — воздействие вещества другой концентрации, при которой происходит разрушение только минимально устойчивых клеток.

Следует отметить, что осмотическая резистентность эритроцитов будет зависеть от их возраста. Самая большая устойчивость у молодых ККТ как у самых плоских.

Определение осмотической резистентности эритроцитов осуществляется следующим образом:

используется несколько стеклянных пробирок, в которые заливается раствор натрий хлорида разной концентрации — чаще всего от 0,7 до 22 %;
в пробирки с раствором добавляют образцы крови, но только в одинаковом количестве;
образцы помещают в условия комнатной температуры на 60 минут;
по истечении срока пробирки с образцами центрифугируют;
полученный после этого окрас жидкости будет указывать на показатели осмотической стойкости эритроцитов.

Если окрас жидкости розовый, это говорит о минимальной концентрации, а вот ярко-красный цвет будет говорить о максимальной. Норма для сферической резистентности эритроцита составляет 0,32–0,44 процента раствора натрия хлорида.

Осмотическая резистентность эритроцитов

Норма для взрослого человека следующая:

максимальная устойчивость — норма 0,32–0,34 %;
минимальная осмотическая резистентность эритроцитов — 0,46–0,48 %.

Если норма не соблюдается, то есть показатели выше или ниже, это может свидетельствовать о развитии определенного патологического процесса в организме. Даже незначительное отклонение от нормы может указывать на довольно тяжелые патологические процессы в организме, поэтому осмотическое давление нужно обязательно контролировать.

Норма показателей может нарушаться вследствие определенных заболеваний как острого, так и хронического типа. Максимальные показатели резистентности могут наблюдаться в следующих случаях:

атеросклероз;
злокачественные новообразования в желудочно-кишечном тракте;
талассемия;
полицитемия, но только в некоторых случаях;
спленэктомия;
гемоглобинопатия;
гемоглобиноз;
застойная желтуха;
врожденные заболевания крови;
системные и аутоиммунные патологии.

Минимальная осмотическая резистентность может быть следствием таких патологических процессов:

железодефицитная анемия;
гемолитическая анемия у новорожденных;
отравление тяжелыми металлами;
обширная интоксикация организма;
наследственная форма гемолитической анемии.

Небольшое отклонение от нормы может быть обусловлено такими заболеваниями:

лейкоз;
цирроз печени;
туберкулез.

Предрасполагающие факторы для снижения устойчивости ККТ:

выработка шарообразных эритроцитов — генетическое отклонение;
завершение жизненного цикла ККТ, что приводит к шарообразной форме;
сердечно-сосудистые заболевания.

Определить, что именно привело к такому нарушению, можно только путем диагностических мероприятий. Поводом для начала обследования будет соответствующая клиническая картина.

Клиническая картина будет носить общий характер. Специфических симптомов, которые будут характерны только отклонению от нормы резистентности ККТ, нет.

Может присутствовать симптоматика такого характера:

бледность кожных покровов;
снижение веса без видимой причины;
повышенная утомляемость и нарастающая слабость, что будет больше похоже на синдром хронической усталости;
плохой аппетит;
сонливость;
обострение хронических заболеваний.

При наличии клинической картины нужно обращаться к врачу. Первоначально это врач общей практики, то есть терапевт. Далее обследованием занимаются гематолог и смежные специалисты.

Если диагностически будет установлено, что показатели ниже или выше допустимых, в обязательном порядке нужно проходить лечение, так как большая часть этиологических факторов представляет опасность не только для здоровья, но и для жизни пациента.

Лечение будет полностью основываться на первопричинной патологии. Терапевтические мероприятия могут быть как консервативными, так и радикальными. Прогноз носит исключительно индивидуальный характер.

Источник

Осмотическая резистентность эритроцитов

Красные кровяные тельца (или эритроциты) — наиболее многочисленные клетки крови. Особое устройство мембраны позволяет им захватывать молекулы кислорода в капиллярах легких и транспортировать его к тканям и органам. Однако при определенных патологиях структура оболочки эритроцитов становится менее устойчивой и легко разрушается. Такие изменения приводят к значительному уменьшению количества красных телец в крови и последующему нарушению кислородного обмена в тканях организма.

Способность мембран красных клеток крови противостоять разрушению под воздействием неблагоприятных факторов получила название резистентность. Особое значение при диагностике заболеваний имеет осмотическая резистентность (ОРЭ) — сохранение устойчивости оболочки клетки в условиях изменения концентрации растворенных солей в окружающей ее среде.

Методика измерения осмотической резистентности

Клетки крови способны нормально функционировать в изотоническом растворе (содержание ионов NaCl не превышает 0,85%). Такая концентрация NaCl соответствует количеству ионов соли в сыворотке крови. Те растворы, которые содержат большее количество солей, называются гипертоническими, а меньшее — гипотонические. Мембраны клеток, помещенных в такие растворы, быстро разрушаются.

Эритроциты здорового человека способны выдерживать изменения осмотического давления, то есть обладать прочной оболочкой. Для определения стойкости мембран клеток крови используют следующую методику:

В пробирки помещается раствор NaCl c разной степенью концентрации (начиная от самой большой — 0,7%, до наименьшей — 0,22%);
В каждую пробирку добавляется небольшое количество крови (не более 0,02 мл);
В течение следующего часа пробирки держат при температуре в 22-23°C;
Полученные растворы центрифугируют и по цвету содержимого высчитывают примерное время начала разрушения клеток крови и момент их полного гемолиза;

Чуть розовый раствор свидетельствует о том, что эритроциты только начали разрушаться, тогда как ярко-красный цвет — знак того, что произошел полный распад клеток.

При помощи этого анализа определяют минимальную и максимальную осмотическую резистентность кровяных телец. Максимальная соответствует тому значению содержания NaCl, при котором происходит полное разрушение клеток крови. Минимальная же определяется тем количеством, при котором клетки разрушаются меньше всего.

Подготовка к процедуре. Нормальные значения резистентности.

Расчет значений осмотической резистентности позволит определить причину нехватки эритроцитов в крови пациента. Для проведения анализа кровь берется из вены и сразу же помещается в пробирку с антикоагулянтом, чтобы избежать ее свертывания. В каких-либо особых приготовлениях перед сдачей анализа нет необходимости — пациент может не менять привычный ему режим питания.

Для взрослого человека нормальными показателями являются следующие значения:

минимальная резистентность — не выше 0,48%;
максимальная — не ниже 0,32%

Следует помнить, что у маленьких детей показатели устойчивости значительно выше, чем у взрослых пациентов, в то время как у пожилых — немного ниже нормы.

Существует несколько факторов, которые могут повлиять на достоверность данных анализа:

недавнее переливание крови;
присутствие во взятом образце патогенных микроорганизмов, которые вызывают гемолиз клеток;
некоторые заболевания, при которых количество зрелых эритроцитов в крови минимально (тяжелые формы анемии);
наконец, человеческий фактор — неосторожное обращение с наполненными пробирками может привезти к преждевременному гемолизу;

Если вышеперечисленные причины отсутствовали, а результат анализа выходит за пределы нормы, то можно говорить о серьезном заболевании, за которым последуют значительные нарушения обмена веществ в организме.

Отклонения от стандартных показателей

ОРЭ менее 0,33% развивается в следующих ситуациях:

значительные кровопотери;
при талассемии (наследуемое заболевание, при котором нарушен синтез белков, входящих в состав гемоглобина);
при спленэктомии (удалении части селезенки — органа, активно участвующем в процессах кроветворения);
при полицитемии (нарушение функций кроветворных клеток костного мозга);

Резистентность более 0,48% связана с такими заболеваниями как:

наследственная гемолитическая анемия (передающаяся по наследству патология, при которой организм активно разрушает свои же клетки крови);
гемолитическая анемия новорожденных (диагностируется в течение первых дней жизни младенца. Может быть как наследственной, так и приобретенной);
отравление солями тяжелых металлов;

Как правило, отклонения от нормальных показателей резистентности сигнализируют о сбоях в работе организма, причем чаще всего диагностируемые патологии носят наследственный характер.

Предотвращение снижения ОРЭ

Как правило, причиной снижения резистентности клеток становятся наследственные заболевания. Пациенты, столкнувшиеся с такой проблемой, могут обратиться к генетику, чтобы рассчитать возможность появления такого же заболевания у их детей. В остальных случаях профилактика снижения плотности мембраны клеток крови сводится к ведению здорового образа жизни, отсутствию вредных привычек, созданию наиболее благоприятных условий для процесса кроветворения.

Признаки снижения резистентности клеток крови

Еще до проведения анализа, пациент может найти у себя признаки снижения устойчивости мембран кровяных телец. Вот основные проявления подобного отклонения:

Сонливость;
Угнетенное состояние;
Значительное снижение массы тела;
Анемичность слизистых оболочек;
Повышенная температура тела;
Отсутствие интереса к еде;

Перечисленные симптомы должны стать серьезным поводом для беспокойства. При их обнаружении следует немедленно записаться на прием к врачу и пройти полное обследование. Чем раньше будет поставлен диагноз, тем быстрее можно будет начать лечение и тем меньший вред будет нанесен организму.

Зависимость устойчивости мембраны от формы кровяных телец и их возрастных изменений

Плотность мембраны зависит не только от возраста клеток, но и от их формы. Сформировавшийся эритроцит приобретает вид двояковогнутого диска, однако также могут встречаться и дегенеративные формы эритроцитов: сферические, звездчатые, полулунные, серповидные и т.д. Для разных заболеваний характерны свои изменения клеток крови. К примеру, при серповидно-клеточной анемии развиваются серповидные эритроциты, талассемия характеризуется появлением овальных клеток, большинство видов анемий проявляют себя появлением сфероцитов — эритроцитов сферической формы.

Нормальную устойчивость мембраны имеют лишь эритроциты в форме двояковогнутого диска. Красные клетки крови другой конфигурации менее жизнеспособны — их резистентность составляет 0,4-0,6% при обычных показателях в 0,32-0,48%. Кроме того, такие клетки, как правило, не способны качественно выполнять свои функции. Из патологических форм чаще всего встречаются овальные эритроциты. Такие клетки можно наблюдать не только при болезнях крови, но и у полностью здоровых людей, поскольку, чем старше становятся эритроциты, тем более округлыми они становятся.

Таким образом, наиболее устойчивыми клетками являются молодые, недавно сформировавшиеся эритроциты, отличающиеся наиболее выраженной дисковидной формой.

Методика расчета осмотической устойчивости нередко применяется при обнаружении гемоглобинопатии и прочих заболеваний крови и отличается эффективностью и простотой. Наиболее часто его применяют для обнаружения гемолитической анемии и онкогематологии (в том числе и у новорожденных).

источник

ЗАНЯТИЕ №11

Тема. Нарушения системы эритроцитов.

Цель занятия. Изучить причины, механизм развития, гематологические показатели и клинические проявления различных видов анемий.

1. Эритроцитозы, определение понятия, виды, клинические проявления.

2. Характеристика абсолютных и относительных, наследственных и приобретенных эритроцитозов, их этиология и патогенез.

3. Анемии, определение, принципы классификации ( по этиологии, патогенезу, типу кроветворения, цветовому показателю, регенераторной способности костного мозга, размеру и форме эритроцитов).

4. Острая постгеморрагическая анемия, этиология, патогенез, стадии, гематологические проявления.

5. Гемолитическая анемия, причины, механизмы развития, гематологические проявления.

6. Железодефицитная анемия, причины, механизмы развития, гематологические проявления.

7. В-12-(фолиево)-дефицитная анемия, причины, механизмы развития, гематологические проявления.

8. Гипо- и апластические анемии, причины, механизмы развития, гематологические проявления.

9. Клинические проявления и компенсаторно-приспособительные механизмы при анемиях.

10. Принципы диагностики и лечения анемий.

11. Осмотическая резистентность эритроцитов, определение понятия, виды.

12. Причины и механизм нарушения осмотической резистентности и скорости оседания эритроцитов, их диагностическое значение.

Работа №1. Характеристика показателей красной крови при экспериментальной гемолитической анемии.

1.Пробирки простые	— 5 шт.
2. Штатив на 5 гнезд	— 2 шт.
3. Пипетки на 0,02мл	— 4 шт.
4. Пипетки на 5мл	— 4 шт.
5. Иглы от шприца для прокола вены	— 2 шт.
6. Стеклянная палочка в стакане	— 2 шт.
7. Стакан с ватой	— 2 шт.
8. Обезжиренные предметные стекла	— 4 шт.
9. Стекло со шлифованными гранями	— 2 шт.
10. Ванночка для окраски мазков со стеклянными рельсами	— 2 шт.
11. Полоски фильтровальной бумаги	— 20 шт.
12. Чашки Петри, выстланные влажной фильтровальной бумагой	— 2 шт.
13. Счетная камера и шлифованное покровное стекло к ней	— 2 шт.
14. Микроскопы	— 4 шт.
15. Фотоэлектроколориметр	— 1 шт.
16. Этиловый спирт (96 0 )	— 20 мл
17. Трансформирующий раствор (ацетонциангидрин – 0,5мг; калий железосинеродистый – 0,2г; натрия гидрокарбонат – 1г; дистиллированная вода – до 1л)	— 20 мл — 20 мл
18. Калибровочный раствор гемиглобинцианида (61,23 мг/100 мл)	— 10 мл
19. 1% раствор хлорида натрия	— 20 мл
20. Смесь Никифорова (96 0 этиловый спирт и этиловый эфир в соотношен 1:1)	— 100 мл
21. Насыщенный раствор бриллианткрезолбладу в абсолютном спирте (краска – 1,2г; абсолютный спирт – до 100 мл)	— 10 мл
22. Животные: кролик с гемолитической анемией	1 шт.

Методика проведения опыта.

Гемолитическая анемия у кролика воспроизводится путем подкожного введения 1% раствора фенилгидразина солянокислого (5мг/кг) трехкратно в течение 6 дней (с двухдневным интервалом).

В день занятия из краевой вены кролика (после прокола) набирают 0,02 мл крови в пробирку с заранее налитым трансформирующим раствором в количестве 5 мл, при этом кровь разводится в 251 раз. Содержимое пробирки тщательно перемешивают, оставляют стоять на 10 мин, а затем фотометрируют на фотоэлектроколориметре при длине волны 560нм (зеленый светофильтр) в кювете с толщиной слоя 1 см против холостой пробы (трансформирующий раствор).

При тех же условиях обрабатывают и измеряют стандартный раствор с концентрацией гемоглобинцианида – 61,23 мг/100мл, что соответствует количеству гемоглобина в крови, равному 15,4 г/100мл при разведении ее в 251 раз.

Концентрация гемоглобина в крови (Гб, г%) вычисляется по формуле:

Гб = (Еоп/Ест)·С·К·0,001, где

Еоп – экстинция опытной пробы;

Ест – экстинция стандартного раствора;

С – концентрация гемиглобинцианида в стандартном растворе, мг%;

К – кратность разведения крови;

0,001 – коэффециент для пересчета мг/100 в г/100мл.

Одновременно берут 0,02мл крови в пробирку, в которую предварительно наливают 4 мл 1% раствора хлорида натрия (кровь разводится в 200 раз). Содержимое пробирки перемешивают и оставляют стоять до момента счета.

Счетную камеру подготавливают следующим образом. Камеру с сеткой и покровное стекло насухо протирают. Затем покровное стекло прижимают к камере с такой силой, чтобы по краям его появились радужные полосы.

Перед заполнением счетной камеры разведенной кровью содержимое пробирки встряхивают. Затем стеклянной палочкой отбирают каплю разведенной крови и подносят ее к краю покровного стекла, следя за тем, чтобы она равномерно заполнила всю поверхность камеры с сеткой.

Эритроциты подсчитывают под малым увеличением (окуляр-7 х , объектив-8 х ) в 5 больших (80 малых) квадратах сетки Горяева и вычисляют по формуле:

Эр=(А· С· 4000)/В, где

Эр — искомое число эритроцитов;

А – сумма клеток, подсчитанных в малых квадратах сетки;

В – количество сосчитанных малых квадратов (80);

С – разведение крови (в 200 раз)

4000 – множитель, приравнивающий объем малого квадрата (1/4000 мм 3 ) к 1 мм 3 .

Для характеристики степени насыщаемости гемоглобином отдельного эритроцита определяют так называемый цветовой показатель (ЦП) по следующей формуле:

ЦП=(Гб· 3)/Эр, где

Гб – концентрация гемоглобина (в г%);

Эр – первые две цифры (сотни тысяч) эритроцитов;

3 – постоянный коэффициент.

Параллельно оценивают количество ретикулоцитов в крови. Для этого на предварительно окрашенное краской (бриллиант-крезолблау) предметное стекло помещают каплю исследуемой крови и делают мазок обычным способом. Препарат помещают во влажную камеру на 8-10 минут, затем высушивают его и рассматривают под иммерсионной системой микроскопа (окуляр-15 х , объектив – 90 х ).

Подсчитывают 1000 эритроцитов и определяют среди них процентное содержание ретикулоцитов (ретикулоциты отличаются от окрашенных в зеленый цвет эритроцитов наличием в цитоплазме синих зерен или сетки). Для облегчения подсчета эритроцитов из бумаги вырезают кружок, соответствующий диаметру окуляра микроскопа. В центре кружка проделывают небольшое четырехстороннее отверстие и вставляют в оптическую систему окуляра.

Работа №2. Изучение показателей красной крови при экспериментальной постгеморрагической анемии.

1.Животные: кролик с постгеморрагической анемией — 1 шт.

Методика проведения опыта:

У кролика за 2 дня до занятия выпускают 40-50% крови, вследствие чего развивается острая постгеморрагическая анемия.

В день занятий в крови, взятой из краевой вены, определяют концентрацию гемоглобина, подсчитывают число эритроцитов и ретикулоцитов, вычисляют цветовой показатель (способы оценки указанных параметров крови см. в работе №1).

Результаты, полученные в работах 1 и 2, сопоставляют и анализируют. В заключении обсуждают механизмы развития постгеморрагической и гемолитической анемий.

Работа №3. Характеристика клеточного состава крови больных с различными видами анемий.

с постгеморрагической анемией — 2 шт.

с гемолитической анемией — 2 шт.

с В12 – дефицитной анемией — 2 шт.

3.Иммерсионное масло в масленке — 10 мл.

Под иммерсионной системой микроскопа (окуляр – 15 х , объектив – 90 х ) изучают готовые мазки крови больных с указанными анемиями. Обращают внимание на патологические формы эритроцитов (анизо-, пойкилоцитоз; мегалобластический тип гемопоэза и др.). Обнаруженные в мазках крови измененные эритроциты зарисовывают в тетрадях. Делают выводы по проделанной работе.

Работа № 4. Оценка осмотической резистентности эритроцитов при постгеморрагической и гемолитической анемиях у кроликов.

2.Штативы на 10 гнезд — 3 шт.

5.Игла от шприца для прокола вены — 3 шт.

6.Центрифуга лабораторная — 1 шт.

7.1% раствор хлорида натрия — 50 мл.

8.Дистиллированная вода — 50 мл.

10. Животные: кролик с постгеморрагической

кролик с гемолитической анемией — 1 шт.

Методика проведения опыта.

Способы моделирования постгеморрагической и гемолитической анемий см. в работах 1 и 2.

В день занятия из краевой вены кролика после прокола иглой берут 2-3 мл крови с двумя каплями гепарина. Содержимое пробирки сразу же перемешивают для предотвращения образования сгустков крови и центрифугируют 10 минут при 2000 об/мин. Для анализа используют эритроцитарную массу.

Из 1 % раствора хлорида натрия готовят ряд разведений (табл.1).

№ пробирок
1% р-р NaCI, в мл.	1,8	1,6	1,4	1,2	1,0	0,9	0,8	0,6	0,5
Дист. вода, в мл.	0,2	0,4	0,6	0,8	1,0	1,1	1,2	1,4	1,5
Конц. р-ра NaCI,в%	0,9	0,8	0,7	0,6	0,5	0,45	0,4	0,3	0,25
Взвесь эритроцитов	П о д в е к а п л и
Результаты

Максимальная осмотическая резистентность эритроцитов определяется в той первой пробирке, в которой наблюдается полный гемолиз. Минимальная осмотическая резистентность эритроцитов регистрируется после центрифугирования пробирки ( при 1000 об/мин. в течение 5 минут), содержащей супернатант со следами гемолиза ( розовый оттенок надосадочной жидкости).

минимальная осмотическая резистентность эритроцитов – 0,46- 0,48% раствор хлорида натрия;

максимальная осмотическая резистентность эритроцитов – 0,28 -0,32 % раствор хлорида натрия.

В данной работе исследуют кровь опытных и контрольного кроликов. Полученные результаты сопоставляют и анализируют.

В заключении обсуждают возможные механизмы нарушения физико-химических свойств эритроцитов при изученных анемиях.

Работа № 5. Характеристика скорости оседания эритроцитов при развитии острого воспалительного процесса.

1.Капилляр Панченкова — 5 шт.

3.Лезвие для безопасной бритвы — 1 шт.

5.Стеклянная палочка в стакане — 1 шт.

7.5% раствор трехзамещенного цитрата натрия — 10 мл.

8.Этиловый спирт (96 0 ) — 10 мл.

9.Животные: крысы с воспалительной реакцией — 2 шт.

Методика проведения опыта.

Эксперимент ставят на двух крысах. За двое суток до занятия одной из них вводят в брюшную полость 7- 8 мл стерильного мясопептонного бульона, а другой — подкожно 0,5 мл скипидара. В обоих случаях развивается регионарное асептическое воспаление.

На занятии у опытной и контрольной (интактной) крыс определяют скорость оседания эритроцитов. Для этого капилляр Панченкова промывают раствором цитрата натрия. Затем цитрат натрия набирают до метки “P” (¼ полного объема капилляра) и вдувают его на часовое стекло.

После надреза боковой поверхности корня хвоста животного в капилляр Панченкова набирают кровь до метки “K” (полный объем капилляра). Кровь переносят на часовое стекло и тщательно перемешивают е?