Анализ крови телят норма

Анализ крови телят норма thumbnail
 
Показатель
Возраст
1-5 дней 10-15 дней
 
1 мес 3 мес

Кровь

рН 7,38-7,41 7,35-7,41 7,38-7,45 7,40-7,42

Гематокрит,% 35-37 36-37 37-38 38-40

Эритроциты,1012 /л 7,4-8,4 6,4-6,8 8,2-8,6 7,8-8,0

Лейкоциты,109/л 7,1-12,1 9,3-12,5 8,2-8,6 9,3-10,0

Гемоглобин, г/л 105-109 90-126 109-113 112-128

Глюкоза, ммоль/л 4,5-5,0 4,2-4,4 – 3,2-3,6

Сыворотка (плазма) крови

Общий белок, г/л 56,9-60,5 56,5-59,1 61-63 62-66

Резервная щелочность, 54-56 52-54 50-54 53-55

об.%СО2

Мочевина, ммоль/л 2,4-3,6 3,6-3,7 – –

Билирубин, мкмоль/л 4,7-8,2 2,6-3,4 – –

Кальций общий,

ммоль/л 2,7-3,2 2,6-2,7 – 2,7-3,0

мг% 10,8-12,8 – – –

Фосфор неорганический

ммоль/л 4,8-7,4 4,5-6,8 – 5,88-6,0

мг% 1,5-2,3 1,4-2,2 – 1,9-2,0

Магний, ммоль/л 1,3-1,4 1,3-1,4 1,2-1,3 1,2-1,3

Витамин. А, мкмоль/л 1,4 1,4 1,4 1,4

Нормативы показателей крови ягнят

 
Показатель
Возраст
1 день 14 дней 1 мес 4-6 мес

Кровь

Эритроциты,1012 /л 9-10,2 6,5-8,7 8,4-9,8 9,2-12,2

Лейкоциты,109 /л 4-7 5-6,5 5,2-8,0 6,1-10,4

Гематокрит,% 35-37 36-37 3,7-38 38-40

Гемоглобин, г/л 100-120 94-113 92-122

Глюкоза, ммоль/л 5,5-5,8 4,9-5,2 4,1-4,7 2,9-3,4

Сыворотка крови

Общий белок, г/л 46-54 64-59 60-62 62-71

Резервная щелочность

(плазма) об.%СО2 49-56 50-55 50-56 46-60

Биохимические показатели молозива и молока здоровых коров

 
Показатель
Молоко Молозиво
1-го удоя 1-го дня 2-го дня 3-го дня 4-го дня 5-го дня

Кислотность,0 Т 16-19 40,0 33,0 27,3 23,1 21,6

Кетоновые тела, 4-8 2-6 – – – – 6-8

мг%

Каротин, мкг% 8-28 110-400 – – – – –

Магний, мг% 11-15 25-33 – – – – 15-17

Мочевина, мг% 20-40 15-20 – – – – 18-24

Кальций 125- 260- 235- 183- 181- 176- 168-

общий, мг% -130 -180 -152 -147 -141 -140 -90,0

Белок общий,% 2,7-5,0 22,5 14,8 9,4 5,8 4,0 3,9

Ретинол,мкг% 13-3,5 150-580 – – – – –

Сахар

молочный,% 4.0-5,6 – 3,0 3,6 3,9 4,1 4,1

Токоферол, мкг% 8-10 – – – – – –

Фосфор неоргани- 60- 152- 160- 128- 109- 97- –

ческий, мг% -65 -96 -90 -80 -70 -69

рН 6,3-6,5 – – – – – –

Натрий, мг% 36- 63 – – – – – –

Калий, мг% 140-180 – – – – – –

Нитраты,мг/кг Не более 10

ЛИТЕРАТУРА

1. Авдонин И.С. Агрохимия. М.: Изд-во МГУ, 2002.

2. Агрохимические методы исследования почв. – М.: Наука, 2005. – 656 с.

3. Алексеев Ю.В. Тяжелые металлы в почвах и растениях. – СПб.: Агропромиздат, 2007. – 142 с.

4. Анспок П.И. Микроудобрения. Справочник. М.: Агропромиздат, 2000.

5. Арзуманян Е.А. Животноводство. – М: Агропромиздат, 2007.

6. Аринушкина Е.В. Руководство по химическому анализу почв. – М.: Изд-во МГУ, 2007. – 487 с.

7. Артюшин Н.Л. Удобрения в интенсивных технологиях возделывания сельскохозяйственных культур. М.: Агропромиздат, 2011.

8. Безуглова О.С. Удобрения и стимуляторы роста. Ростов-на-Дону: Феникс, 2000.

9. Беспамятнов Г.П., Кротов Ю.А. Предельно допустимые концентрации химических веществ в окружающей среде. – СПб.: Химия, 2005. – 528 с.

10. Большаков В.А., Краснова Н.М., Борисочкина Т.И., Сорокин С.Е., Граковский В.Г. Агротехногенное загрязнение почвенного покрова тяжелыми металлами: источники, масштабы, рекультивация. – М., 2003. – 90 с.

11. Васильев В.А.: Справочник по органическим удобрениям. – М.: Росагропромиздат, 2008.

12. Давыдова С.Л. О токсичности ионов металлов. – М.: Знание, 2001. – 32 с.

13. Кабата-Пендиас А., Кабата-Пендиас Х. Микроэлементы в почвах и растениях. – М.: Мир, 2009. – 439 с.

14. Кальницкий Б.Д. Минеральные вещества в кормлении живот­ных. – СПб.: Агропромиздат., 2005. – 207 с.

15. Лебедев Н.И. Использование микродобавок для повышения продуктивности жвачных животных. – СПб.: Агропромиздат, 2000. – 96 с.

16. Левичева Н.Б., Иванчикова И.Г. Практикум по неорганической химии. Калининград, 2007.

17. Мельников Н.Н. Пестициды: Химия, технология и применение. М.: Химия, 2012.

18. Минеев В.Г. Экологические проблемы агрохимии. – М.:Химия, 2010 – 283 с.

19. Минеев В.Г., Ремпе Е.Х. Агрохимия, биология и экология почвы. – М.: Росагропромиздат, 2012.

20. Муравин Э.А.: Агрохимия. – М.: КолосС, 2003.

21. Орлов Д.С., Малинина М.С., Мотузова Г.В. и др. Химическое загрязнение почв и их охрана. – М.: Агропромиздат, 2001. – 303 с.

22. Орлова А.Н.: От азота до урожая. – М.: Просвещение, 2010.

23. Петербургский А.В. Основы агрохимии. М.: Просвещение, 2013.

24. Пискунов А.С. Методы агрохимических исследований. – М.: КолосС, 2004.

25. Постников А.В. Химизация сельского хозяйства. М.: Росагропромиздат, 2008.

26. Русин Г.Г.: Физико-химические методы анализа в агрохимии. – М.: Агропромиздат, 2009.

27. Смирнов П.М.: Агрохимия. – М.: Агропромиздат, 2001.

28. Сударкина А.А., Евсеева И.П., Орлова А.Н. Химия в сельском хозяйстве. М.: Просвещение, 2014.

29. Федюшкин Б.Ф.: Минеральные удобрения с микроэлементами. – Л.: Химия, 2010.

30. Школьник М.Я. Микроэлементы в жизни растений. – СПб.: Наука, 2000. – 324 с.

Не нашли, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Источник

/ Обзоры и публикации / Ветеринария

СИ

Собака

Кошка

Корова

Лошадь

Свинья

Овца

Коза

Кролик

Лама

Страус

АЛТ*

u/L

8.2-57

8.3-53

6.9-35

2.7-21

22-47

15-44

15-52

48-80

20

Амилаза

u/L

270-1,462

371-1,193

41-98

47-188

44-88

140-270

167-315

Щелочная фосфатаза

u/L

10.6-101

12-65

18-153

70-227

41-176

27-156

61-283

4-16

30-780

32-98

AСТ*

u/L

8.9-49

9.2-40

45-110

116-287

15-55

49-123

66-230

14-113

110-250

131-486

Креатининкиназа

u/L

14-120

17-150

14-107

34-166

66-489

7.7-101

16-48

218-2,705

30-400

294

ГГА*

u/L

1.0-9.7

1.8-12

4.9-26

2.7-22

31-52

20-44

20-50

0-14

5-29

2.1

ЛДГ*

u/L

24-219

35-225

309-938

102-341

160-425

83-476

79-265

34-129

СДГ*

u/L

3.1-7.6

2.4-6.1

6.1-18

1.2-8.5

0.5-4.9

3.5-21

9.3-21

85-740

Бикарбонаты

mmol/L

18-25

16-22

21-29

22-29

18-27

20-27

16-38

Билирубин общий

mmol/L

0.9-10.6

1.2-7.9

0.7-14

5.4-51

0.3-8.2

0.7-8.6

1.7-4.3

0-12

1.7

Кальций

mmol/L

2.2-3.0

2.0-2.7

2.1-2.8

2.6-3.3

2.3-2.9

2.3-2.9

2.3-2.9

1.4-3.1

2-2.4

2.7-3.5

Хлориды (Cl-)

mmol/L

102-117

108-130

96-109

97-110

97-106

101-113

100-112

92-112

106-118

100

Холестеринl

mmol/L

3.0-6.6

1.8-4.2

1.6-5.0

1.8-3.7

2.1-3.5

1.1-2.3

1.7-3.5

0.3-2.1

Креатинин

mmol/L

44-138

49-165

56-162

77-175

70-208

76-174

60-135

44-221

133-256

8.8-35

Глюкоза

mmol/L

3.4-6.0

3.4-6.9

2.3-4.1

3.5-6.3

3.7-6.4

2.4-4.5

2.7-4.2

4.1-8.5

5.0-7.7

14

Магний

mmol/L

0.7-1.1

0.8-1.2

0.7-1.2

0.7-1.1

0.9-1.4

0.8-1.1

0.9-1.2

Фосфор

mmol/L

1.0-2.0

1.3-2.4

1.4-2.5

0.7-1.7

1.8-3.0

1.3-2.4

1.2-3.1

1.3-2.2

1.5-3.2

1.3-3.2

Калий (K+)

mmol/L

3.8-5.6

3.8-5.3

4.0-5.8

2.8-4.7

4.4-6.5

4.3-6.3

3.8-5.7

3.6-6.9

4.3-5.6

3.0

Белок
Альбумин
Глобулин

g/L
g/L
g/L

55-75
26-40
21-37

57-80
24-38
24-47

62-82
28-39
29-49

57-79
25-38
24-46

58-83
23-40
39-60

59-78
27-37
32-50

61-75
23-36
27-44

54-83
24-46
15-28

55-70
35-44
17-35

38
18
20

Натрий (Na+)

mmol/L

140-154

146-159

135-148

133-147

139-153

142-160

137-152

131-155

147-158

147

Мочевина

mmol/L

3.1-9.2

5.5-11.1

2.8-8.8

3.7-8.8

2.9-8.8

3.7-9.3

4.5-9.2

4.6-10.4

4.6-11.4

0.4

АЛТ – Аланинаминотрансфераза
АСТ – Аспартатаминотрансфераза
ГГА –  Гамма-глутамилтранспептидаза
ЛДГ – Лактатдегидрогеназа
СДГ – Сорбитолдегидрогеназа

Гематологические показатели у различных видов животных

СИ

Собака

Кошка

Корова

Лошадь

Свинья

Овца

Коза

Кролик

Лама

Страус

Гематокрит

x 10-2 L/L

37-55 (25-34)

30-45 (24-34)

24-46

32-48

36-43 (26-35)t

27-45

22-38

33-50

29-39

32

Гемоглобин

x 10 g/L

12-18

8-15

8-15

10-18

9-13

9-15

8-12

10-17

13-18

12

Эритроциты

x 1012
g/L

5.5-8.5

5-10

5-10

6-12

5-7

9-15

8-18

5-8

11-18

1.7

Ретикулоциты

%

0-1.5

0-1

0-12

Средний объем эритроцита

fL

60-77

39-55

40-60

34-58

52-62

28-40

16-25

58-67

21-28

174

Среднее содержание гемоглобина в эритроците*

pg

19.5-24.5

13-17

11-17

13-19

17-24

8-12

5.2-8

17-24

43-47

61

Средняя концентрация гемоглобина в эритроците**

x 10 g/L

32-36

30-36

30-36

31-37

29-34

31-34

30-36

29-37

33

Тромбоциты

x 1011/ L

2-9

3-7

1-8

1-6

2-5

2.5-7.5

3-6

2.5-6.5

Лейкоциты

x 109/L

6-17

5.5-19.5

4-12

6-12

11-22

4-12

4-13

5-12.5

7.5-21.5

5.5

Сегментоядерные нейтрофилы

% x 109/L

60-70 3-11.4

35-75 2.5-12.5

15-45 0.6-4

30-75 3-6

20-70 2-15

10-50 0.7-6.0

30-48 1.2-7.2

20-75 1-9.4

60-74 4.6-16

63
3.4

Палочкоядерные нейтрофилы

% x 109/L

0-3 0-0.3

0-3 0-0.3

0-2 0-0.12

0-1 0-0.1

0-4 0-0.8

редко

0-1 0-0.35

Лимфоциты

% x 109/L

12-30 1-4.8

20-55 1.5-7

45-75

25-60

35-75 3.8-16.5

40-75 2-9

50-70 2-9

30-85 1.6-10.6

13-35 1-7.5

34
188

Моноциты

% x 109/L

3-10
0.15-1.35

1-4 0-0.85

0-10 0-1

0-6 0-0.75

0-4 0-0.55

1-4
0.05-0.5

1-4
0.05-0.8

2.8
0.15

Эозинофилы

% x 109/L

2-10 0.1-0.75

2-12 0-0.75

2-20 0-2.4

1-10 0-0.8

0-15
0-1.5

0-10
0-1

1-8
0.05-0.65

1-4
0.05-0.5

0-15 0-3.3

0.3
0.02

Базофилы

% x 109/L

редко

редко

0-2 0-0.2

0-3 0-0.3

0-3 0-0.5

0-3 0-0.3

0-1 0-0.12

1-7
0.05-0.9

0-2 0-0.4

0.2

Общий белок

x 10 g/L

6-7.5

6-7.5

6-8

6-8.5

6-8

6-7.5

6-7.75

5.4-8.3

СОЭ

x 10 g/L

0.15-0.3

0.15-0.3

0.1-0.6

0.1-0.4

0.2-0.4

0.1-0.5

0.1-0.4

0.2-0.4

0.1-0.4

Источник

Читайте также:  Норма мочевины крови мужчин

УДК 636.2:591.111:57.032

ДИНАМИКА БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ У
НОВОРОЖДЕННЫХ ТЕЛЯТ В ПЕРВУЮ НЕДЕЛЮ ЖИЗНИ


М.И. РЕЦКИЙ, С.В. ШАБУНИН, А.И. ЗОЛОТАРЁВ, Г.Н. БЛИЗНЕЦОВА,
Д.Б. ЧУСОВ

У телят красно-пестрой породы изучали возрастную динамику биохимических показателей крови в течение 1-й нед жизни. Установили, что в этот период многие биохимические показатели крови существенно и быстро изменяются. Показано, что выпойка первых порций молозива, возраст и функциональная зрелость органов и систем играют важную роль в достижении гомеостаза в первые часы жизни.

Ключевые слова: телята, новорожденные, адаптация, кровь, метаболиты, ферменты.

В первые часы жизни в организме новорожденного теленка происходят существенные физиолого-биохимические перестройки, связанные с высокой потребностью в энергии и формированием нового метаболического статуса (1, 2). При этом концентрация различных компонентов крови может изменяться вследствие функциональной незрелости систем и органов, проявления специфической активности ферментов, адаптации к новой среде обитания. В этот период электролитный и водный баланс находятся под контролем почек, ведущую роль в обеспечении газового обмена приобретают легкие (3), снабжение питательными веществами происходит через желудочно-кишечный тракт, меняется функциональное состояние печени (4) и поджелудочной железы (5).

Целью настоящей работы было изучение динамики биохимических показателей крови у новорожденных телят в течение 1-й нед жизни.

Методика.Исследования проводили в ОАО «Воронежпищепродукт» (Новоусманский р-н, Воронежская обл.) на 17 новорожденных телятах красно-пестрой породы. Первую порцию молозива животные получали через 1,0-1,5 ч после рождения. С 1-х по 3-и сут жизни телятам давали молозиво каждые 4 ч, в течение 4-6-х сут — каждые 12 ч. За животными вели постоянное клиническое наблюдение, один раз в сутки измеряли частоту дыхания, пульса, ректальную температуру и массу тела.

Образцы крови собирали в течение 10-15 мин после рождения, в возрасте 1, 3, 6, 12, 24 ч, а затем каждые 24 ч (перед кормлением) до 6-х  сут жизни. В сыворотке определяли активность аспартатаминотрансферазы (АсАТ), аланинаминотрансферазы (АлАТ), g-глутамилтрансферазы (ГГТ), щелочной фосфатазы (ЩФ), содержание глюкозы, кальция, фосфора, холестерина, мочевины, креатинина — на биохимическом анализаторе Hitachi-902 («Hitachi High-Technologies Corporation», Япония); активность лактатдегидрогеназы (ЛДГ), общих липидов, триглицеридов, билирубина — с помощью наборов фирмы «Vital Diagnostic» (Россия); содержание кортизола — с использованием набора реагентов для иммуноферментного определения кортизола в сыворотке крови «Стероид-ИФА-кортизол-01» (Россия); натрия — на атомно-абсорбционном спектрофотометре фирмы «perkin elmer», модель 703 (США); общего белка — рефрактометрически; белковые фракции — электрофорезом в агарозном геле; содержание эритроцитов, гемоглобина, величину гематокрита — общепринятыми методами (6).

Статистическую обработку полученных данных проводили в компьютерной программе Statistica 5.0.

Результаты.Признаков ухудшения здоровья у телят обнаружено не было. Масса их тела увеличивалась в течение всего экспериментального периода. Ректальная температура снижалась с 39,40±0,48 °С в момент рождения до 38,50±0,34 °С в возрасте 12 ч, к концу 4-х сут жизни она повышалась до 39,70±0,77 °С, к концу 6-х сут — спадала до 38,20±0,53 °С. Частота дыхания за весь экспериментальный период колебалась от 40,20±4,14 до 50,70±5,89 дыхательных движений в минуту. Частота пульса за первые 6 ч снижалась с 185,00±12,78 до 148,20±17,56 уд/мин и стабилизировалась (120-140 уд/мин) на 2-6-е сут.


Анализ крови телят норма

Рис. 1. Гематокритное число и содержание гемоглобина в крови у новорожденных телят красно-пестрой породы в зависимости от возраста (Новоусманский р-н, Воронежская обл.).

Читайте также:  Как снизить соэ в крови и его нормы

К суточному возрасту у телят уменьшалось (P < 0,05) содержание гемоглобина (с 116,00±5,24 до 99,20±2,38 г/л), число эритроцитов (с 8,50±0,37 до 7,30±0,24 1012/л), величина гематокрита (с 33,80±0,55 до 29,40±0,71 %) (рис. 1). Концентрация глюкозы в сыворотке крови при рождении была низкой. Через 3 ч после выпойки первой порции молозива она увеличивалась, но к 8-му ч жизни снижалась. К 18-му ч после рождения количество глюкозы в крови повышалось (Р < 0,01) и стабилизировалось к 24-му ч после рождения. Изменения концентрации глюкозы в крови за счет гликогенолиза служит физиологическим механизмом приспособления в период, когда поджелудочная железа и печень функционируют еще недостаточно. В наших опытах максимальное значение этого показателя было отмечено в течение 1 ч после рождения, что может быть результатом процесса гликогенолиза, связанного с увеличением активности симпатического отдела ЦНС.


Анализ крови телят норма

Рис. 2. Концентрация глюкозы (1) и кортизола (2) в сыворотке крови у новорожденных телят красно-пестрой породы в зависимости от возраста (Новоусманский р-н, Воронежская обл.).

Повышение активности гипофизарно-адреналовой системы играет важную роль в инициации акта рождения (7), поэтому сразу после него в сыворотке крови телят была установлена наиболее высокая концентрация кортизола. К 3-му ч жизни она уменьшалась с 85,40±15,16 до 30,00±2,17 нг/мл, к концу 6-х сут — до 10,3±1,97 нг/мл (рис. 2). Обратная линейная зависимость между содержанием глюкозы и кортизола у новорожденных телят уже была установлена другими авторами (8). Следовательно, состояние углеводного обмена и гипофизарно-адреналовой системы играет важную роль в начальный период адаптации.

Содержание холестерина и триглицеридов в сыворотке крови телят повышалось в первые 24 ч жизни, что было связано с выпойкой первых порций молозива, содержащего большое количество липидов  (табл. 1). По достижении телятами 6-суточного возраста концентрация холестерина увеличивалась в 3 раза, триглицеридов — приблизительно в 20 раз.

1. Возрастные изменения показателей липидного и белкового обмена в сыворотке крови у новорожденных телят красно-пестрой породы (M±m, Новоусманский р-н, Воронежская обл.)

Возраст

Холестерин, ммоль/л

Триглицериды,  ммоль/л

Общий белок, г/л

Альбумины, г/л

Глобулины, г/л

10-15 мин

0,75±0,05

0,030±0,001

45,0±0,9

33,0±0,9

12,1±0,5

1 ч

0,86±0,04

0,040±0,001

47,1±1,2

33,0±0,9

14,1±0,4

3 ч

0,81±0,04

0,040±0,002

45,2±0,9

31,2±0,8

14,0±0,5

6 ч

0,75±0,05

0,070±0,001*

54,5±2,4

30,2±1,5

24,2±0,9*

12 ч

0,88±0,06

0,090±0,001*

57,6±1,9

29,1±1,2

28,5±1,2*

24 ч

1,14±0,08*

0,400±0,034*

60,1±2,7*

28,0±1,3*

32,1±2,1*

2 сут

1,30±0,05*

0,450±0,027*

63,3±3,1*

31,1±1,2

32,2±1,8*

3 сут

1,48±0,09*

0,460±0,025*

62,5±2,5*

32,3±1,5

30,3±2,1*

4 сут

1,82±0,11*

0,620±0,019*

59,8±1,8*

31,1±1,3

28,6±0,9*

5 сут

2,05±0,17*

0,600±0,020*

59,7±1,7*

32,0±1,1

27,7±0,9*

6 сут

2,34±0,16*

0,630±0,021*

57,1±1,8*

32,0±1,1

25,1±1,0*

* Р < 0,01 по сравнению возрастом 10-15 мин.

количество глобулинов и общего белка после выпойки молозива также возрастало. К 48-му ч содержание белка достигало максимальных значений и оставалось относительно постоянным до конца 6-х сут жизни. Концентрация альбуминов в сыворотке несколько уменьшалась к концу 1-х сут, что было связано с увеличением относительного содержания глобулинов во фракции общего белка к 6-му ч жизни. Доля глобулинов постепенно снижалась и составляла 25 г/л к концу 6-х сут. Выпойка молозива, как было установлено (9, 10), оказывает прямое влияние на этот показатель.

Активность ГГТ через 1,5-2,0 ч после первой выпойки молозива  увеличивалась в 18,6 раза, активность ЩФ за этот период возрастала в 1,5, АсАт и АлАТ — в 1,6, ЛДГ — в 1,3 раза. Максимальную активность всех изученных ферментов отмечали в конце 1-х сут жизни телят (табл. 2).

2. Возрастные изменения активности некоторых ферментов (Ед/л) в сыворотке крови у новорожденных телят красно-пестрой породы (M±m, Новоусманский р-н, Воронежская обл.)

Возраст

ГГТ

ЩФ

ЛДГ

АсАТ

АлАТ

10-15 мин

23,0±1,5

235,5±19,5

421,5±20,4

27,1±1,4

5,0±0,1

1 ч

29,2±1,6

247,4±18,4

493,0±19,8

26,0±1,2

5,1±0,2

3 ч

428,4±34,1*

364,0±20,0

546,0±21,6

38,4±1,7

8,3±0,4*

6 ч

1293,0±141,1*

507,7±35,6*

621,5±29,4*

 56,2±1,7*

9,7±0,4*

12 ч

1720,1±234,5*

622,1±44,2*

706,6±30,0*

 73,2±5,1*

11,1±0,7*

24 ч

2200,2±259,1*

898,0±75,7*

759,3±25,5*

 80,9±6,4*

12,0±0,6*

2 сут

1940,0±196,1*

528,3±51,1*

680,1±14,9*

 45,4±3,5*

12,5±0,8*

3 сут

724,5±54,2*

362,4±24,9

621,0±22,9*

32,2±2,4

16,3±0,7*

4 сут

465,0±25,6*

320,1±14,7

602,5±30,1*

30,1±1,9

12,5±0,5*

5 сут

313,4±12,8*

305,0±19,8

607,3±25,2*

32,0±1,3

13,1±0,5*

6 сут

283,7±19,6*

307,3±20,0

608,2±17,4*

31,0±1,2

14,0±0,2*

П р и м е ч а н и е. ГГТ, ЩФ, ЛДГ, АсАТ и АлАТ — соответственно g-глутамилтрансфераза, щелочная фосфатаза, лактатдегидрогеназа, аспартатаминотрансфераза и аланинаминотрансфераза.

* Р < 0,01 по сравнению возрастом 10-15 мин.

Наиболее существенно за первые 24 ч возрастала активность γ-глутамилтрансферазы. В возрасте 1 сут она превышала исходную в 95,6 раза. В работах на телятах (9) и ягнятах (11) также зафиксировано увеличение активности этого фермента после первых кормлений. Считают, что повышение активности γ-глутамилтрансферазы в сыворотке крови новорожденных можно использовать в качестве маркера интенсивности всасывания белков молозива в первые сутки жизни (12).

Активность ЩФ у телят через 24 ч после рождения превышала исходную в 3,8 раза (P < 0,01). Она была выше, чем у телят возрасте от 4 до 8 нед (395,0±50,67 Ед/л) и телок в возрасте от 11 до 18 нед (133,05±10,29 Ед/л) (13). в сыворотке крови у ягнят активность ЩФ была связана с ростом активности кишечной формы ЩФ и повышалась между 15-м и 21-м ч после рождения (14). Однако не удалось установить связи активности ЩФ в сыворотке с другими компонентами молозива, поэтому считают, что увеличение ее активности в сыворотке крови новорожденных телят не в полной мере отражает степень всасывания молозивных белков. Активность ГГТ и ЩФ в сыворотке крови новорожденных телят может быть как молозивного, так и кишечного происхождения, а изменение активности АсАТ, АлАТ и ЛДГ — скорее физиологическая реакция, чем ответ на выпойку молозива (15).


Анализ крови телят норма

Рис. 3. Возрастные изменения содержания креатинина (А), мочевины (Б) и билирубина (В) в сыворотке крови новорожденных телят красно-пестрой породы (Новоусманский р-н, Воронежская обл.).

Содержание натрия в сыворотке крови через сутки после рождения составляло 63,00±0,68 ммоль/л, причем возраст и первое потребление молозива телятами существенно не влияли на этот показатель. На концентрацию фосфора и кальция выпойка молозива также существенно не влияла. Их содержание несколько уменьшалось к суточному возрасту — соответственно с 2,60±0,38 до 2,40±0,39 (P > 0,1) и с 3,40±0,45 до 3,00±0,37 ммоль/л (P > 0,1).

Читайте также:  Понижены тромбоциты норма крови

Концентрация креатинина (рис. 3, А) за первые 24 ч уменьшалась в 2,47 раза (P < 0,001). Возможное объяснение этому — малое изменение почечного кровотока при рождении и его возрастание к концу 1-х сут (16). Доля мочевины (см. рис. 3, Б) в сыворотке крови с возрастом постепенно уменьшалась. По данным H.W. Brooks с соавт. (17), мочевина переносится посредством простой диффузии через мембрану почечных канальцев, и ее концентрацию в крови можно использовать в качестве грубого индикатора клубочковой фильтрации. Содержание билирубина (см. рис. 3, В) к концу 1-х сут жизни увеличивалось более чем в 6 раз, к 6-суточному возрасту — снижалось. Вследствие физиологической незрелости ферментных систем печени у плода и новорожденного понижена активность глюкуронилтрансферазы, а способность незрелых гепатоцитов к секреции непрямого билирубина повышена. В сочетании с усиленным всасыванием непрямого билирубина в кишечнике это приводит к развитию гипербилирубинемии (18). Уменьшение концентрации билирубина к 6-суточному возрасту может быть связано с повышением скорости клубочковой фильтрации и возрастным становлением ферментативных систем печени.

Итак, у телят в 1-ю нед жизни многие биохимические показатели крови изменяются достаточно быстро. Снижение содержания кортизола, креатинина и мочевины наиболее существенно и обусловлено состоянием нейро-эндокринной и выделительной систем. Изменение количества билирубина, активности аспартатаминотрансферазы, аланинаминотрансферазы и лактатдегидрогеназы представляет собой физиологическую реакцию, связанную с функцией печени и почек. Весьма значительное повышение концентрации γ-глобулинов, липидов и активности γ-глутамилтрансферазы в сыворотке крови определяется их высоким содержанием в молозиве. Таким образом, в достижении гомеостаза в первые часы жизни животных важную роль играет выпойка первых порций молозива, возраст, а также функциональная зрелость органов и систем. Поэтому результаты анализов биохимических показателей крови у новорожденных телят необходимо трактовать крайне осторожно, учитывая указанные причины модификации метаболического профиля в течение 1-й нед постнатального периода развития.

Л и т е р а т у р а

1. R i c h e t  E.,  D a v i c c o  M.J.,  B a r l e t  J.P. Plasma catecholamine concentrations in lambs and calves during the perinatal period. Reprod. Nutr. Dev., 1985, 25: 1007-1016.
2. Х о ч а ч к а  П.,  С о м е р о  Д. Стратегия биохимической адаптации. М., 1977.
3. U y s t e p r u y s t  C.H.,  R e i n h o l d  P.,  C o g h e  J. e.a.  Mechanics of the respiratory system in healthy newborn calves using impulse oscillometry. Res. Vet. Sci., 2000, 68: 47-55.
4. G r o d z k i  K.,  L e c h o w s k i  R.,  L e n a r c i k  M. The biochemical profile of calves’ liver in the course of diarrhea during the first 10 days of life. Pol. Arch. Weter., 1991, 31: 49-63.
5. Z a b i e l s k i  R.,  M o r i s s e t  J.,  P o d g u r n i a k  P. e.a.  Bovine pancreatic secretion in the first week of life: potential involvement of intestinal CCK receptors. Regul. Pept., 2002, 103: 93-104.
6. К о н д р а х и н  И.П.,  К у р и л о в  Н.В.,  М а л а х о в  А.Г.  Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии. М., 1985.
7. J a c o b  S.K.,  R a m n a t h  V.,  P h i l o m i n a  P.T. e.a. Assessment of physiological stress in periparturient cows and neonatal calves. Indian J. Physiol. Pharmacol., 2001, 45: 233-238.
8. K u r z  M.M.,  W i l l e t t  L.B. Carbohydrate, enzyme, and hematology dynamics in newborn calves. J. Dairy Sci., 1991, 74: 2109-2118.
9. W e a v e r  D. M.,  T y l e r   J.W.,  V a n M e t r e  D.C. e.a. Passive transfer of colostral immunoglobulins in calves. J. Vet. Intern. Med., 2000, 14: 569-577.
10. B l u m  J.W. Nutritional physiology of neonatal calves. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. (Berl.), 2006, 90: 1-11.
11. M a d e n  M.,  A l t u n o k  V.,  B i r d a n e  F.M. e.a. Blood and colostrum/milk serum gamma-glutamyltransferase activity as a predictor of passive transfer status in lambs. J. Vet. Med. B. Infect. Dis. Vet. Public Health, 2003, 50: 128-131.
12. Р е ц к и й  М.И.,  Ш а х о в  А.Г.,  Б л и з н е ц о в а  Г.Н. и др. Тест для оценки пассивного переноса колостральных иммуноглобулинов. Ветеринария, 2008, 6: 48-50.
13. B u s h  L.J.,  S t a l e y  T.E. Absorption of colostral immunoglobulins in newborn calves. J. Dairy Sci., 1980, 63: 672-680.
14. H e a l y  P.J. Isoenzymes of alkaline phosphatase in serum of newly born lambs. Res. Vet. Sci., 1975, 19: 127-130.
15. B o y d  J.W. Relationships between acid-base balance, serum composition and colostrum absorption in newborn calves. Br. Vet. J., 1989, 145: 249-256.
16. W a n g  J.,  R o s e  J.C. Developmental changes in renal renin mRNA half-life and responses to stimulation in fetal lambs. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 1999, 277: R1130-1135.
17. B r o o k s  H.W.,  G l e a d h i l l  A.,  W a g s t a f f  A.J. e.a. Fallibility of plasma urea and creatinine as indices of renal function in diarrhoeic calves treated with conventional or nutritional oral rehydration solutions. Vet. J., 1997, 154: 35-39.
18. P e a r s o n  E.G.,  D i r k s e n  G.,  M e y e r  J. e.a. Evaluation of liver function tests in neonatal calves. J. Am. Vet. Med. Assoc., 1995, 207: 1466-1469.


DYNAMICS OF BIOCHEMICAL PARAMETERS OF BLOOD IN
NEWBORN CALVES AT THE FIRST WEEK OF THEIR LIFE

M.I. Retskii, S.V. Shabunin, A.I. Zolotarev, G.N. Bliznetsova, D.B. Chusov

In calves of the Red-and White breed the authors studied the age dynamics of biochemical parameters of blood during first week of their life. It was established, that at the this period many biochemical indices of blood alter profoundly and rapidly. Intake the first portions of a colostrum, the age and the functional ripeness of organs and systems play the important role in achievement of a homeostasis at the first o’clock of life of neonatal calves.

Key words: calves, newborn, adaptation, blood, metabolites, enzyme.

ГНУ Всероссийский научно-исследовательский
ветеринарный институт патологии, фармакологии
и терапии Россельхозакадемии
,
394087 г. Воронеж, ул. Ломоносова, 114-б,
e-mail: retsky@mail.ru, vnivipat@mail.ru, gnbiznetsova@mail.ru

Поступила в редакцию
27 ноября 2008 года

Оформление электронного оттиска

Источник